miR-29a-3pinhibitor体外诱导人体mBreg细胞的用途及方法与流程

mir
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29a
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3p inhibitor体外诱导人体mbreg细胞的用途及方法
技术领域
1.本发明涉及分离纯化和诱导细胞领域，具体的说是人mir
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29a
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3p inhibitor在体外诱导人体mbreg细胞的用途以及分离和诱导mbreg细胞的方法。


背景技术：

2.目前在动物模型和临床患者中均证实breg在移植急、慢性排斥的发生中均起到重要作用，检测breg不但可以预测术后患者发生急、慢性排斥的风险，动物实验中还发现过继性输注breg可以缓解排斥反应。mbreg细胞可以通过分泌il
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10和涉及ctla
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4的细胞间接触来抑制t细胞的增殖和抑制作用，从而提供保护，维持机体免疫平衡。但是breg因为在人体内数量极少，在体外存活时间较短，且无法有效由普通b细胞诱导，目前实验多局限于动物模型，目前的breg过继回输实验也存在很大的局限性。因此要对breg细胞的进一步深入的研究，首先要建立一种高效的细胞分离和诱导方法。
3.breg的主要特征是产生并分泌白细胞介素il
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10和(或)转化生长因子tgf
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β等细胞因子，从而起到抑制炎症反应的负向调节作用，但是目前还没有公认的breg细胞的表型，其中cd19

cd24
hi
cd27

是目前研究最为广泛的breg，且这群细胞在肝移植患者发生慢性排斥时显著降低，可以用来预测肝移植术后急性排斥的发生。目前世界上诱导breg的方式主要通过baff（b
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cell activating factor）对普通b细胞进行诱导，而该技术诱导纯度仅10~30%左右，得到的量较少，无法满足进一步科研和临床研究的需要。
4.microrna是一类小的非编码rna, 通过与靶基因的3
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非翻译区通过碱基对的互补结合抑制其翻译或降解其mrna从而下调靶蛋白的表达水平。microrna 通过影响靶基因的表达而调控许多生理和疾病过程。目前已有研究证实microrna在免疫细胞的生长分化中起到关键作用，并进一步参与到肝移植术后急性排斥的发生中。我们希望通过调控b细胞中的mir
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3p的表达促进b细胞向cd19

cd24
hi
cd27
breg细胞分化从而达到临床研究和治疗的需要。
5.细胞治疗是目前有望在自身免疫性疾病，器官排斥等领域取得一定疗效的治疗方法，最近breg的过继性输注成为细胞治疗的新分支，但是一直限制breg细胞临床应用的主要问题是breg细胞来源比较少，目前的体外诱导效率低并且其活性也低。


技术实现要素：

6.为了解决breg细胞来源少，体外诱导效率低并且其活性也低的技术问题，本发明提出一种mir
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3p inhibitor在体外诱导人体breg细胞的用途。mir
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3p通过结合于nfat5靶基因的3’utr区域促进nfat5蛋白的降解，nfat5信号通路是体内免疫细胞的重要通路，在免疫稳态中起着重要作用，发明人在试验中偶然发现可以利用mir
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3p inhibitor诱导普通b细胞向mbreg细胞转化，从而为基础和临床人体mbreg相关研究提供新的方法。
7.由此，申请人提出了一种mir
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3p inhibitor在体外诱导人体mbreg细胞的用途，以及利用mir
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3p inhibitor体外诱导人体mbreg细胞的方法。
8.进一步的本发明选择诱导cd19

cd24
hi
cd27
b细胞作为mbreg。
9.本发明的目的是针对现有breg诱导和分离技术的不足，提出mir
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3p inhibitor在体外诱导人体breg细胞的用途。以及一种新的诱导breg细胞的方法，满足实验条件，操作简单，耗时短，转化效率高，能够弥补目前breg基础和临床研究上数量不足的难题。
10.进一步的，本发明还提出mir
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3p inhibitor诱导cd19

b细胞向mbreg细胞转化的用途。
11.进一步的，诱导普通b细胞为cd19

cd24
hi
cd27

breg细胞亚群。
12.mir
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3p inhibitor在体外诱导人体mbreg细胞，以及mir
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3p inhibitor诱导cd19

b细胞向breg细胞转化的效果中，采用mir
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3p inhibitor诱导breg细胞诱导纯度高，诱导后breg促炎炎性细胞因子分泌减少，诱导后breg抑制功能增强。
13.进一步的，所述cd19

b细胞采用如下步骤分选：第一步：获取外周血单核淋巴细胞，利用血细胞单采仪获取浓缩人外周血单个核细胞50~80ml，与生理盐水或pbs1：1等比例混合，每30ml一份缓慢沿试管壁加入15ml单核淋巴细胞分离液（ficoll）上， 两者不要混匀；20℃、 2300rpm，减速1，离心23分钟，取血浆和ficoll液之间细胞云雾层，得单核淋巴细胞悬液；第二步：将第一步获得的单核淋巴细胞悬液，20℃、1500rpm离心5分钟加入洗涤两次，弃上清，使用血球计数板对细胞数量进行计数，以25ul/10
7 加入pbs重悬细胞；加入5ul/107的cd19 microbeads，室温孵育30分钟，pbs洗涤一次后用4mlautomacs buffer重悬，启动automacs机器，设置阳选程序，分选获得cd19阳性细胞。
14.本发明还提出一种应用mir
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3p inhibitor分离和诱导breg细胞的方法，包括以下步骤：第一步：获取单核淋巴细胞，利用血细胞单采仪获取浓缩人外周血单核淋巴细胞50~80ml，与pbs 1：1等比例混合，每30ml一份缓慢沿试管壁加入15ml单核淋巴细胞分离液（ficoll）上；20℃、2300rpm，减速1，离心23分钟，取上细胞悬液中间云雾层，即得单核淋巴细胞悬液；第二步：获取cd19
b细胞，第一步获得的单核淋巴细胞悬液，20℃、1500rpm离心5分钟加入洗涤两次，弃上清，以25ul/10
7 加入生理盐水重悬细胞；加入5ul/107的cd19 microbeads，室温孵育30分钟，生理盐水洗涤一次后用4mlautomacs buffer重悬，启动automacs机器，设置阳选程序，分选获得cd19阳性细胞；第三步：诱导调节性b细胞（breg）；第三步获得的cd19

细胞，20℃、1500rpm离心5分钟加入洗涤两次，弃上清，以0.5*106/ml 的细胞浓度利用培养基重悬，加入b细胞活化因子（baff）和/或mir
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3p inhibitor进行培养；第四步：纯度和功能检测，3天后收集106个细胞重悬于100微升pbs中，加入cd19 fitc、cd24 perpcy5.5、cd27 apc流式抗体，4℃避光孵育30
‑
45分钟，pbs洗涤两次，流式细胞仪检测细胞纯度。
15.进一步优选的，获取所述单核淋巴细胞的步骤包括：
筛选健康志愿者，从健康志愿者体内获取血液的步骤；采用血细胞单采仪将获取的血液浓缩细胞血液样本的步骤；采用ficoll淋巴细胞分离液，获取单核淋巴细胞的步骤；磁珠分选分离cd19

普通b细胞的步骤。
16.进一步优选的，采用ficoll淋巴细胞分离液，获取单核淋巴细胞的步骤包括，取血液、pbs和ficoll淋巴细胞分离液（1：1：1），将血液与pbs充分混合后缓慢沿试管壁加至ficoll液面之上,避免两者混匀。37℃、2300rpm离心23分钟，取中间云雾细胞层，获得单核淋巴细胞。
17.按照本发明的方法所分选和诱导出的cd19

cd24
hi
cd27
breg细胞亚群，更为符合机体处于免疫稳态时breg细胞的功能状态，而这是传统baff诱导方法无法完成的。利用本发明的方法分离和诱导breg细胞，其优势如下：1、来源广。利用磁珠分选分离普通b细胞并加入mir
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3p inhibitor体外诱导，其基数大，获得的breg细胞相比直接从人体内分选cd19

cd24
hi
cd27
breg细胞亚群，其绝对数量有明显优势；2、细胞活性高。免疫磁珠分选过程段，效率高，相比流式分选能够最大限度保持细胞活性；3、污染可能性小，全程在超净台完成，避免污染4、在纯度和功能上明显优于目前的baff诱导方法。该细胞分离和诱导技术的成功建立，为breg细胞的进一步功能研究提供了一种新的实验方法。
18.为了获得更好的诱导人体breg细胞效果，本发明申请人提出了一种利用磁珠分选仪（automacs）分离cd19

b细胞，并在体外加入人mir
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3p inhibitor诱导成mbreg细胞的方法，能够弥补目前breg基础和临床研究上数量不足的缺点。按照本发明的方法所分选和诱导出的cd19

cd24
hi
cd27
mbreg细胞亚群，更为符合机体处于免疫稳态时breg细胞的功能状态，而这是传统baff诱导方法无法完成的。利用本发明的方法分离和诱导breg细胞，其优势如下：1、来源广。利用磁珠分选分离普通b细胞并诱导，其基数大，获得的breg细胞相比直接从人体内分选cd19

cd24
hi
cd27
mbreg细胞亚群，其绝对数量有明显优势；2、细胞活性高。免疫磁珠分选过程段，效率高，能够最大限度保持细胞活性，从而在体外存活时间更长；3、污染可能性小；4、在纯度和功能上明显优于目前的baff诱导方法。该细胞分离和诱导技术的成功建立，为breg细胞的进一步功能研究提供了一种新的实验方法。
附图说明
19.图1普通cd19

b细胞获取示意图；图2诱导前cd19

cd24
hi
cd27

细胞比例示意图；图3 普通b细胞诱导纯度图；图4诱导后breg促炎炎性细胞因子分泌减少显示图；图5诱导后breg抑制功能增强显示图；
图6本发明的流程示意图。
具体实施方式
20.实施例1：mir
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3p inhibitor在体外诱导人体mbreg细胞的用途。
21.进一步的，mir
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3p inhibitor诱导cd19

b细胞向mbreg细胞转化的用途。
22.进一步的，诱导普通b细胞为cd19

cd24
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breg细胞亚群。
23.mir
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3p inhibitor在体外诱导人体mbreg细胞，以及mir
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3p inhibitor诱导普通b细胞向mbreg细胞转化的效果中，采用mir
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3p inhibitor诱导breg细胞诱导纯度高见图3，诱导后breg炎性细胞因子分泌减少见图4，诱导后breg抑制功能增强见图5。
24.如图6所示，一种分离和诱导breg细胞的方法，包括以下步骤：第一步：获取单核淋巴细胞，利用血细胞单采仪获取浓缩人外周血单核淋巴细胞50~80ml，与生理盐水已1：1比例混合，每30ml一份缓慢沿试管壁加入15ml单核淋巴细胞分离液（ficoll）上；20℃、2300rpm离心23分钟，取上细胞悬液中间云雾层，即得单核淋巴细胞悬液；第二步：获取cd19 b细胞，第一步获得的单核淋巴细胞悬液，20℃、1500rpm离心5分钟加入洗涤两次，弃上清，以25ul /10
7 加入生理盐水重悬细胞；加入5ul/107的cd19 microbeads，室温孵育30分钟，生理盐水洗涤一次后用4mlautomacs buffer重悬，启动automacs机器，设置阳选程序，分选获得cd19

细胞；第三步：诱导调节性b细胞（breg）；将第三步获得的cd19阳性细胞，20℃、1500rpm离心5分钟加入洗涤两次，弃上清，以0.5*106/ml 的细胞浓度利用培养基重悬，加入b细胞活化因子（baff）和/或mir
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3p inhibitor进行培养；第四步：纯度和功能检测，培养3天后收集106个细胞重悬于100微升pbs中，加入cd19 fitc、cd24 perpcy5.5、cd27 apc流式抗体，4℃避光孵育30
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45分钟，pbs洗涤两次，流式细胞仪检测细胞纯度。
25.进一步优选的，采用免疫磁珠分选技术分选出cd19

cd24
hi
cd27
breg细胞亚群。
26.图1为cd19 b细胞获取示意图：如图1所示，招募志愿者（5名），签署知情同意书后，由血液科专业医师利用血细胞单采仪采集志愿者的外周血单个核细胞标本。获得标本后，利用淋巴细胞分离液进行密度梯度离心分离出pbmc。 将细胞表面孵育上cd19磁珠，再通过automacs免疫磁珠细胞分选仪，将cd19阳性的b细胞分选提纯，并利用流式细胞仪进行检测。
27.进一步优选的，获取所述单核淋巴细胞的步骤包括：筛选健康志愿者，从健康志愿者体内获取血液的步骤；采用血细胞单采仪将获取的血液浓缩细胞血液样本的步骤；采用ficoll淋巴细胞分离液，获取单核淋巴细胞的步骤；磁珠分选分离cd19

普通b细胞的步骤。
28.进一步优选的，采用ficoll淋巴细胞分离液，获取单核淋巴细胞的步骤包括，取血液、pbs和ficoll淋巴细胞分离液（1：1：1），将血液与pbs充分混合后缓慢沿试管壁加至ficoll液面之上。37℃、2300rpm离心23分钟，取中间云雾细胞层，获得单核淋巴细胞。
29.图2为诱导前cd24 cd27 细胞比例示意图，利用流式细胞仪对automacs磁珠细胞分选仪分选出的cd19 b细胞进行检测。在细胞表面染上cd19、cd24、cd27的流式抗体。通过流式细胞仪分析检测，圈出cd19 b细胞，再进一步分析这群细胞中cd24、cd27双阳的细胞比例，从图2中可以看出，诱导前cd24hicd27 细胞比例。如图2所示约占5.58%。
30.实施例2：1实验材料1.1 样本获取从健康志愿者获取血液样本。
31.1.2 所需试剂和实验器材cd19 fitc,cd24 perpcy5.5, cd27 apc流式抗体（biolegend）；培养基（rpmi 1640, 10% fbs, 100mg/ml streptomycin, 10000u/ml penicilin, gibco）；automacs（macs）；flow cytometer流式细胞仪（bd）；细胞培养箱（thermo）；显微镜（zeiss axiovert）。
32.2 方法2．1 外周血单核淋巴细胞的获取如图1所示，利用血细胞单采仪（血细胞单采机）分离人体（健康志愿者）内单个核细胞约2*109个（约80ml血液）。取血液、pbs和ficoll淋巴细胞分离液（1：1：1），将血液与pbs充分混合后缓慢沿试管壁加至ficoll液面之上，防止两者混匀。37℃、2300rpm，减速1，离心23分钟，取中间云雾细胞层，即单核淋巴细胞。
33.2．2磁珠分选分离cd19

普通b细胞。
34.根据细胞计数结果，加入相应剂量cd19 microbeads，室温 30分钟。经automacs磁珠分选仪阳选获得cd19

普通b细胞，pbs洗涤一次。
35.2．3诱导调节性b细胞。
36.以0.5*106/ml 的细胞浓度利用培养基重悬，加入b细胞活化因子（baff）或者mir
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3p inhibitor进行培养3天。
37.2．4 纯度检测。
38.3天后106个细胞重悬于100微升pbs中，加入cd19 fitc、cd24 perpcy5.5、cd27 apc流式抗体，4℃避光孵育30
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45分钟，pbs洗涤两次，流式细胞仪检测细胞纯度，mir
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3p inhibitor诱导组纯度明显增高（见图3）。
39.图3为mbreg细胞诱导纯度图：将automacs分选出的cd19 b细胞在体外进行人工诱导，诱导其向cd24 cd27 细胞分化。分别设置未处理组、b细胞激活因子（baff）组、mir
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3p inhibitor组。加入相应的试剂3天后，用流式细胞仪分别检测每组样本的cd19 b细胞中cd24 cd27 细胞的比例。结果表明mir
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3p inhibitor能够显著提升cd24 cd27 细胞的比例（对照组;baff组;抑制剂组分别为4.43；13.7%；23.1%）。
40.2．5细胞因子和抑制能力检测将按上述方法分得的细胞在3天后检测炎性细胞因子（ifn
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α1，ifn
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β1），其分泌水
平明显下降（见图4）。
41.图4为诱导后breg促炎细胞因子分泌减少显示图（h为培养小时数，none为对照组，baff为b细胞激活因子组，inhibitor为mir
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3p抑制剂组）：将不同处理组的breg细胞在处理后24小时、72小时，分别进行检测炎性因子的表达情况。ifn
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α1和ifn
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β1都是干扰素（interferon，ifn）家族的两种类型，都参与了炎性环境的发生发展。通过流式检测发现，在处理后的早期（24h），三组的ifn分泌无差异。但在处理后期（72h），inhibitor组的ifn分泌量明显少于对照组和baff组。
42.与效应cd8 t细胞以一定比例共培养（1：2，1：4，1：8，b cell: t cell），4天后检测t细胞增殖水平，发现通过磁珠分选和加入mir
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3p inhibitor的方法获得的breg细胞具有较强的抑制t细胞增殖的功能（见图5）。
43.图5为诱导后breg抑制功能增强显示图：将分离提纯的cd19 b细胞在体外进行人工诱导，分别应用b细胞激活因子（baff）、mir
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29a
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3p inhibitor处理。在处理3天后，将每组的b细胞与效应t细胞分别以breg：t cell=1：2，1:4，1:8的比例进行混合共培养。共培养4天后，利用流式进行cfse检测，检测效应t细胞的增殖情况。结果发现，经mir
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3p inhibitor处理过的breg抑制能力得到增强。在1:2，1:4，1:8比例下，inhibitor组的抑制效率分别为65%，58%，52%。而对照组和baff组分别为56%，45%，37%和50%，35%，24% 。
44.除上述实施外，本发明还可以有其他实施方式。凡采用等同替换或等效变换形成的技术方案，均落在本发明要求的保护范围。