EAF1蛋白在调控花青素合成和开花时间中的应用的制作方法

eaf1蛋白在调控花青素合成和开花时间中的应用
技术领域
1.本发明属于生物技术领域，具体涉及eaf1蛋白在调控花青素合成和开花时间中的应用。


背景技术：

2.豆科(leguminosae)植物约有700属18000种，是仅次于菊科和兰科的第三大科，广泛分布于全世界，是人类食物和油料以及牧草、绿肥、药材和木材等的重要来源，具有重要的经济、生态学和生物学价值。但由于大部分豆科作物基因组较大，遗传转化体系尚不成熟等因素，限制了豆科植物功能基因组学的研究。蒺藜苜蓿(medicago truncatula)被认为是研究豆科植物遗传学的模式植物，因为其倍性小，基因组小、自花受粉及种子较多。蒺藜苜蓿的植株再生时间较短，有大量的突变体和多种生态型，具有较高的生物多样性。而且蒺藜苜蓿具有较高的遗传转化效率。蒺藜苜蓿与大部分豆科植物遗传相似性很高，从蒺藜苜蓿获得的信息可以用于其它豆科植物的研究。
3.植物开花标志着从营养阶段转换到生殖阶段，在植物后代繁衍和生态适应过程中发挥着重要作用；其中作物开花的早晚对作物的高产、稳产、品质和区域分布具有重要影响。育种家们将适宜的开花时间作为关键农艺性状之一，一直致力于获得具有理想开花时间的优异种质。对植物开花时间的解析一直是植物分子遗传学、进化生物学、生态学和作物育种学等多个学科的研究热点。但是蒺藜苜蓿开花时间调控的分子机理还尚不清晰，有待进一步研究。
4.花青素(anthocyanins)是一类重要的类黄酮(flavonoids)化合物，广泛存在于植物的花、果实、种子和营养组织中，使组织呈现从橙色、红色、紫色到蓝色等不同颜色。花青素通常在花和果实等生殖器官上形成斑点、条纹以及脉状特异性富集的图案，在吸引昆虫传粉、动物采食进而维持植物子代繁育方面具有重要的生态学功能。相对于花和果实等生殖器官，营养器官上特异性花青素积累现象在大多数植物物种中比较少见，叶片上花青素累积可保护植物免受生物和非生物胁迫。但是控制叶片花青素特异性积累的分子基础还不明确，有待进一步研究。


技术实现要素：

5.本发明的目的为促进植物花青素合成。
6.本发明首先保护eaf1蛋白的应用，可为a1)-a6)中的至少一种：
7.a1)调控花青素合成；
8.a2)培育花青素含量改变的转基因植物；
9.a3)调控植物开花时间；
10.a4)培育开花时间改变的转基因植物；
11.a5)调控植物开花节数；
12.a6)培育开花节数改变的转基因植物。
no：2所示的氨基酸序列。
39.本领域普通技术人员可以很容易地采用已知的方法，例如定向进化和点突变的方法，对本发明的编码所述eaf1蛋白的核苷酸序列进行突变。那些经过人工修饰的，具有与本发明分离得到的所述eaf1蛋白的核苷酸序列75％或者更高同一性的核苷酸，只要编码所述eaf1蛋白，均是衍生于本发明的核苷酸序列并且等同于本发明的序列。
40.这里使用的术语“同一性”指与天然核酸序列的序列相似性。“同一性”包括与本发明的编码seq id no：2所示的氨基酸序列组成的eaf1蛋白的核苷酸序列具有75％或更高，或80％或更高，或85％或更高，或90％或更高，或95％或更高同一性的核苷酸序列。同一性可以用肉眼或计算机软件进行评价。使用计算机软件，两个或多个序列之间的同一性可以用百分比(％)表示，其可以用来评价相关序列之间的同一性。
41.编码所述eaf1蛋白的核酸分子具体可为编码所述eaf1蛋白的基因，命名为eaf1基因。
42.上述任一所述的应用中，所述调控植物花青素合成可为促进植物花青素合成或抑制植物花青素合成。
43.上述任一所述的应用中，所述“培育花青素含量改变的转基因植物”可为培育花青素含量增加的转基因植物或培育花青素含量降低的转基因植物。
44.上述任一所述的应用中，所述“调控植物开花时间”可为植物开花时间提前或植物开花时间推迟。
45.上述任一所述的应用中，所述“培育开花时间改变的转基因植物”可为培育开花时间提前的转基因植物或培育开花时间推迟的转基因植物。
46.上述任一所述的应用中，所述“调控植物开花节数”可为植物开花节数增加或植物开花节数减少。
47.上述任一所述的应用中，所述“培育开花节数改变的转基因植物”可为培育开花节数增加的转基因植物或培育开花节数减少的转基因植物。
48.上述任一所述的应用中，所述植物可为如下c1)至c6)中的任一种：c1)双子叶植物；c2)单子叶植物；c3)豆科植物；c4)蒺藜苜蓿；c5)蒺藜苜蓿r108；c6)突变体eaf1。
49.本发明还保护h1)或h2)。
50.h1)植物育种方法甲，包括如下步骤：增加植物中上述任一所述eaf1蛋白的表达量和/或活性，从而降低花青素含量、开花节数增加和/或开花时间推迟。
51.h2)植物育种方法乙，包括如下步骤：降低植物中上述任一所述eaf1蛋白的表达量和/或活性，从而提高花青素含量、开花节数减少和/或开花时间提前。
52.上述方法中，所述植物可为如下c1)至c6)中的任一种：c1)双子叶植物；c2)单子叶植物；c3)豆科植物；c4)蒺藜苜蓿；c5)蒺藜苜蓿r108；c6)突变体eaf1。
53.本发明还保护一种培育转基因植物甲的方法，可包括如下步骤：提高出发植物甲中上述任一所述eaf1蛋白的表达量和/或活性，得到转基因植物甲；与出发植物甲相比，转基因植物甲的花青素含量降低、开花节数增加和/或开花时间推迟。
54.上述方法中，所述“提高出发植物甲中上述任一所述eaf1蛋白的表达量和/或活性”可通过多拷贝、改变启动子、调控因子、转基因等本领域熟知的方法，达到提高eaf1蛋白的表达量和/或活性的效果。
55.上述方法中，所述“提高出发植物甲中上述任一所述eaf1蛋白的表达量和/或活性”可通过向出发植物甲中导入编码eaf1蛋白的核酸分子实现。
56.上述方法中，编码所述eaf1蛋白的核酸分子可为如下b1)或b2)或b3)或b4)或b5)所示的dna分子：
57.b1)编码区是seq id no：1所示的dna分子；
58.b2)核苷酸序列是seq id no：1所示的dna分子；
59.b3)核苷酸序列是seq id no：3所示的dna分子；
60.b4)与b1)或b2)或b3)限定的核苷酸序列具有75％或75％以上同一性，来源于蒺藜苜蓿且编码上述任一所述eaf1蛋白的dna分子；
61.b5)在严格条件下与b1)或b2)或b3)限定的核苷酸序列杂交，来源于蒺藜苜蓿且编码上述任一所述eaf1蛋白的dna分子。
62.其中，所述核酸分子可以是dna，如cdna、基因组dna或重组dna；所述核酸分子也可以是rna，如mrna或hnrna等。
63.其中，seq id no：1由465个核苷酸组成，seq id no：1所示的核苷酸编码seq id no：2所示的氨基酸序列。
64.上述方法中，所述“向出发植物甲中导入编码eaf1蛋白的核酸分子”具体可通过向出发植物甲导入含有上述任一所述核酸分子的重组载体实现。所述“含有上述任一所述核酸分子的重组载体”具体可为重组质粒peaf1pro::eaf1 gdna。所述重组质粒peaf1pro::eaf1 gdna可为将pcambia2300载体的限制性内切酶ecori和kpni识别序列之间的dna小片段替换为seq id no：3所示的dna分子，得到的重组质粒。
65.上述任一所述出发植物甲可为如下c1)、c2)、c3)、c4)和c6)中的任一种；c1)双子叶植物；c2)单子叶植物；c3)豆科植物；c4)蒺藜苜蓿；c6)突变体eaf1。
66.当出发植物甲为突变体eaf1时，所述转基因植物甲具体可为实施例中的互补株geaf1/eaf1-9、geaf1/eaf1-12或geaf1/eaf1-15。
67.本发明还保护一种培育转基因植物乙的方法，可包括如下步骤：降低出发植物乙中上述任一所述eaf1蛋白的表达量和/或活性，得到转基因植物乙；与出发植物乙相比，转基因植物乙的花青素含量提高、开花节数减少和/或开花时间提前。
68.上述方法中，所述“降低出发植物乙中上述任一所述eaf1蛋白的表达量和/或活性”可通过dna插入、rna干扰、同源重组、基因定点编辑等本领域熟知的方法，达到抑制所述eaf1蛋白的表达量或活性的目的。
69.上述方法中，所述“降低出发植物乙中上述任一所述eaf1蛋白的表达量和/或活性”具体可通过将dna插入eaf1基因的外显子上获得。
70.上述任一所述出发植物乙可为c1)、c2)、c3)、c4)和c5)中的任一种；c1)双子叶植物；c2)单子叶植物；c3)豆科植物；c4)蒺藜苜蓿；c5)蒺藜苜蓿r108。
71.所述转基因植物乙具体可为突变体eaf1。
72.实验证明，向突变体eaf1中导入重组质粒peaf1pro::eaf1 gdna，得到互补株；与突变体eaf1相比，互补株的叶片中花青素含量显著降低，开花节数增加，开花时间推迟。由此可见，eaf1蛋白及其编码基因可以调控花青素合成、开花节数和开花时间。本发明具有重要的应用价值。
附图说明
73.图1为蒺藜苜蓿r108和突变体eaf1的开花表型、开花时间和开花节数的统计结果及叶片表型。
74.图2为蒺藜苜蓿r108和突变体eaf1的花青素含量检测结果。
75.图3为互补株中eaf1基因的表达量检测结果。
76.图4为互补株的开花表型鉴定和开花节数统计结果。
77.图5为互补株的叶片表型。
78.图6为互补株的花青素含量检测结果。
具体实施方式
79.以下的实施例便于更好地理解本发明，但并不限定本发明。
80.下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法。
81.下述实施例中所用的试验材料，如无特殊说明，均为自常规生化试剂商店购买得到的。
82.以下实施例中的定量试验，均设置三次重复实验，结果取平均值。
83.蒺藜苜蓿r108由the nobel foundation(网址为：https://www.nobelprize.org/the-nobel-prize-organisation/the-nobel-foundat ion/)提供。
84.pcambia2300载体和根癌农杆菌agl1均由中国农业科学院生物技术所(即申请人处)提供，公众可以从申请人处获得。
85.yep液体培养基：将蛋白胨10g、酵母提取物10g和氯化钠5g用适量蒸馏水溶解，然后用蒸馏水定容至1l，121℃高压灭菌15min。
86.愈伤诱导液体培养基：将大量元素母液100ml、微量元素母液1ml、有机元素母液1ml、铁盐母液20ml、肌醇100mg、蔗糖30g、生长素4mg和细胞分裂素0.5mg用适量蒸馏水溶解，然后用蒸馏水定容至1l，调节ph值至5.8，121℃高压灭菌15min。
87.愈伤诱导固体培养基：将大量元素母液100ml、微量元素母液1ml、有机元素母液1ml、铁盐母液20ml、肌醇100mg、蔗糖30g、生长素4mg、细胞分裂素0.5mg、头孢200mg、特美汀250mg、卡那霉素50mg和phytagel 3.2g用适量蒸馏水溶解，然后用蒸馏水定容至1l，调节ph值至5.8，121℃高压灭菌15min。
88.分化培养基：将大量元素母液100ml、微量元素母液1ml、有机元素母液1ml、铁盐母液20ml、肌醇100mg、蔗糖20g、头孢200mg、特美汀250mg、卡那霉素50mg和phytagel 3.2g用适量蒸馏水溶解，然后用蒸馏水定容至1l，调节ph值至5.8，121℃高压灭菌15min。
89.生根培养基：将2.215g murashige&skoog basal medium with vitamins(phytotechnology laboratories公司的产品，货号为16b0519138a)、蔗糖15g和琼脂粉7g用适量蒸馏水溶解，然后用蒸馏水定容至1l，调节ph值至5.8，121℃高压灭菌15min。
90.铁盐母液：将乙二胺四乙酸二钠37.3mg和七水合硫酸亚铁27.8mg用适量蒸馏水溶解，然后用蒸馏水定容至1l。
91.大量元素母液：将七水合硫酸镁1.85g、硝酸钾28.3g、硫酸铵4.63g、二水合氯化钙1.66g和磷酸二氢钾4g用适量蒸馏水溶解，然后用蒸馏水定容至1l。
92.微量元素母液：将一水合硫酸锰1g、硼酸500mg、七水合硫酸锌100mg、碘化钾
100mg、二水合钼酸纳10mg、五水合硫酸铜20mg和六水合氯化钴10mg用适量蒸馏水溶解，然后用蒸馏水定容至1l。
93.有机元素母液：将烟酸500mg、盐酸硫胺素500mg和盐酸吡哆醇500mg用适量蒸馏水溶解，然后用蒸馏水定容至1l。
94.突变体eaf1由蒺藜苜蓿tnt1插入突变体库(网址为：https://medicago-mutant.noble.org/mutant/index.php)提供，突变体eaf1在蒺藜苜蓿tnt1插入突变体库中的编号为nf13898。根据蒺藜苜蓿tnt1插入突变体库记载的信息，突变体eaf1为tnt1插入eaf1基因的外显子(eaf1基因不含有内含子)上获得的蒺藜苜蓿突变体。
95.实施例1、eaf1基因的克隆
96.一、突变体eaf1的表型分析
97.取30粒突变体eaf1种子或蒺藜苜蓿r108种子，4℃春化处理7d，然后种植至营养土中，光暗交替培养(16h光照/8h黑暗)，观察表型并统计。
98.光暗交替培养约40d时，部分突变体eaf1和蒺藜苜蓿r108的生长状态见图1中a(wt为蒺藜苜蓿r108，eaf1为突变体eaf1)。结果表明，光暗交替培养40d左右时，突变体eaf1已开花，平均生长至8节，蒺藜苜蓿r108均未开花。
99.统计各株蒺藜苜蓿的开花时间和节数(即第一朵花完全开放时蒺藜苜蓿的生长天数和节数)，然后取平均值。统计结果见图1中b(wt为蒺藜苜蓿r108，eaf1为突变体eaf1，**表示具有极显著性差异，p<0.01)。结果表明，与蒺藜苜蓿r108相比，突变体eaf1的开花时间显著提前，开花节数显著减少。
100.复叶的正面和背面表型见图1中c(wt为蒺藜苜蓿r108，eaf1为突变体eaf1，ad为正面，ab为反面)。结果表明，与蒺藜苜蓿r108相比，突变体eaf1复叶的正面和背面均具有更多的红色斑点。
101.二、叶片花青素含量的检测
102.1、标准曲线的制备
103.(1)取矢车菊素3-o-葡萄糖苷氯化物标准品(sigma-aldrich公司的产品，货号为52976)，用水稀释，得到不同浓度的标准品溶液。
104.(2)用紫外可见分光光度计分别检测530nm处步骤(1)得到的标准品溶液的吸光度值(即a530值)。
105.(3)完成步骤(2)后，分别以标准品溶液的浓度为横坐标，相应的a530值为纵坐标，绘制标准曲线。
106.标准曲线为：y＝0.024x-0.0009；r2＝0.9988。其中x为a530值。
107.2、花青素含量的检测
108.实验重复三次取平均值，每次重复的步骤如下：
109.(1)从生长状态基本一致的待测蒺藜苜蓿(蒺藜苜蓿r108或突变体eaf1)植株上取刚展开的成熟复叶(约50mg)，称重(记为m)；然后将叶片液氮冷冻20min，研磨成粉末；之后分别加入500μl盐酸/甲醇溶液(由999μl甲醇和1μl盐酸混合而成)，振荡混匀，4℃黑暗旋转过夜，获得待测蒺藜苜蓿的提取液。
110.(2)取待测蒺藜苜蓿的提取液，2500g离心15min，获得待测蒺藜苜蓿的上清液。
111.(3)用紫外可见分光光度计检测530nm处待测蒺藜苜蓿的上清液的吸光度值(即
a530值)。
112.(4)将步骤(3)得到的吸光度值代入标准曲线，得到待测蒺藜苜蓿的上清液中花青素的含量；进一步得到待测蒺藜苜蓿叶片中花青素的含量。
113.检测结果见图2(wt为蒺藜苜蓿r108，eaf1为突变体eaf1；数据为平均值
±
标准差，**表示具有极显著性差异，p<0.01)。结果表明，与蒺藜苜蓿r108相比，突变体eaf1叶片中花青素含量显著增加。
114.三、eaf1基因的克隆
115.1、提取蒺藜苜蓿r108植株上取刚展开的成熟复叶的总rna，然后反转录，得到蒺藜苜蓿r108的cdna。
116.2、完成步骤1后，以蒺藜苜蓿r108的cdna为模板，采用引物eaf1-f：5
′-
atgggtgaagaagaagagaaaac-3
′
和引物eaf1-r：5
′-
ctatgcctcctccatgggttctgg-3
′
组成的引物对进行扩增，得到465bp的pcr扩增产物。
117.3、将步骤2得到的pcr扩增产物进行测序。
118.测序结果表明，pcr扩增产物中含有seq id no：1所示的dna分子。seq id no：1所示的dna分子即eaf1基因，编码seq id no：2所示的eaf1蛋白。
119.实施例2、互补株的获得、表型鉴定及花青素含量检测
120.一、重组质粒peaf1pro::eaf1 gdna的构建
121.1、以蒺藜苜蓿r108的基因组dna为模板，采用引物eaf1-ecori-f：5
′-
ccatgattacgaattcgagtaaaggcaaacaccaca-3
′
(下划线为限制性内切酶ecori的识别位点)和引物eaf1-kpni-r：5
′-
tcgacagatccccgggtacctgacgaacctacctttacgt-3
′
(下划线为限制性内切酶kpni的识别位点)组成的引物对进行扩增，得到约3250bp的pcr扩增产物。
122.2、用限制性内切酶ecori和kpni酶切步骤1得到的pcr扩增产物，回收酶切产物。
123.3、用限制性内切酶ecori和kpni酶切pcambia2300载体，回收约9850bp的载体骨架。
124.4、将酶切产物和载体骨架进行连接，得到重组质粒peaf1pro::eaf1 gdna。
125.将重组质粒peaf1pro::eaf1 gdna进行测序。测序结果表明，重组质粒peaf1pro::eaf1 gdna为将pcambia2300载体的限制性内切酶ecori和kpni识别序列之间的dna小片段替换为seq id no：3所示的dna分子，得到的重组质粒。seq id no：3中，自5’末端起，第1-1814位为eaf1基因的启动子，第1815-2279位为eaf1基因，第2280-3219位为终止子。
126.二、重组农杆菌的获得
127.将重组质粒peaf1pro::eaf1 gdna导入根癌农杆菌agl1，得到重组农杆菌，命名为agl1/peaf1pro::eaf1 gdna。
128.三、互补株的获得
129.1、侵染液的制备
130.(1)将agl1/peaf1pro::eaf1 gdna单菌落接种于含50mg/ml利福平和50mg/ml卡那霉素的yep液体培养基，28℃、200rpm振荡培养过夜，得到培养菌液1。
131.(2)完成步骤(1)后，将500μl培养菌液1接种于5ml yep液体培养基，再加入5μl浓度为100mg/ml的乙酰丁香酮水溶液，28℃、200rpm振荡培养，得到od
600nm
值为0.8的培养菌液2。
132.(3)完成步骤(2)后，取培养菌液2，3800rpm离心15min，收集菌体。
133.(4)完成步骤(3)后，取菌体，用含100mg/l乙酰丁香酮的愈伤诱导液体培养基重悬，得到od
600nm
值为0.2的侵染液。
134.2、互补株的获得
135.(1)取生长至4周的突变体eaf1的第一片复叶，先用75％(v/v)乙醇水溶液漂洗10s，再用5％(m/v)次氯酸钠溶液浸泡5min，之后在超净台用无菌水洗涤至少5次，最后将叶片切割4-5个切口。
136.(2)完成步骤(1)后，将所述叶片小块置于侵染液，静置15min。
137.(3)完成步骤(2)后，将所述叶片小块转移至愈伤诱导固体培养基，24℃暗培养4周(每隔2周更换一次培养基)，得到白色胚性愈伤组织。
138.(4)完成步骤(3)后，将白色胚性愈伤组织转移至分化培养基，24℃光暗交替培养4周(每隔2周更换一次培养基)，分化出绿色胚状体。
139.(5)完成步骤(4)后，将绿色胚状体转移至生根培养基，24℃光暗交替培养(每隔2周更换一次培养基)，生根长叶后移至蛭石中，再移至营养土中直至成苗，即互补株。
140.共获得15株互补株。
141.3、实时荧光定量检测互补株中eaf1基因的相对表达量
142.待测蒺藜苜蓿分别为15株互补株、蒺藜苜蓿r108和突变体eaf1。
143.(1)分别提取待测蒺藜苜蓿叶片的总rna，然后反转录，得到待测蒺藜苜蓿的cdna。
144.(2)分别以待测蒺藜苜蓿的cdna为模板，实时定量pcr检测eaf1基因的相对表达量(actin基因为内参基因)。
145.反应体系为20μl，由10μl transstart tip green qpcr supermix、0.5μl上游引物水溶液(浓度为10μm)、0.5μl下游引物水溶液(浓度为10μm)、0.5μl待测蒺藜苜蓿的cdna和8.5μl ddh2o组成。
146.transstart tip green qpcr supermix(2
×
)为全式金公司的产品。
147.反应程序为：94℃5min；94℃10s，60℃20s，72℃20s，40个循环。
148.检测eaf1基因的上游引物为5
′-
gaaatctgataaaccagcggc-3
′
，下游引物为5
′-
ttcaggttcaggttcaggttc-3
′
。
149.检测actin基因的上游引物为5
’-
tcaatgtgcctgccatgtatgt-3’，下游引物为5
’-
actcacaccgtcaccagaatcc-3’。
150.部分检测结果见图3(wt为蒺藜苜蓿r108，eaf1为突变体eaf1，geaf1/eaf1-9、geaf1/eaf1-12和geaf1/eaf1-15为互补株；**表示具有极显著性差异，p<0.01)。结果表明，与蒺藜苜蓿r108相比，突变体eaf1中eaf1基因的表达量显著下降，各个互补株中eaf1基因的表达量均有不同程度的增加，其中3个互补株中eaf1基因的表达量最高，将其依次命名为geaf1/eaf1-9、geaf1/eaf1-12和geaf1/eaf1-15。
151.四、互补株的表型鉴定
152.取30粒待测种子(突变体eaf1种子、蒺藜苜蓿r108种子、geaf1/eaf1-9种子、geaf1/eaf1-12种子或geaf1/eaf1-15种子)，4℃春化处理7d，然后种植至营养土中，光暗交替培养(16h光照/8h黑暗)，观察表型并进行统计。
153.光暗交替培养40d时，geaf1/eaf1-9、突变体eaf1和蒺藜苜蓿r108的生长状态见图
4中a(wt为蒺藜苜蓿r108，eaf1为突变体eaf1，geaf1/eaf1为geaf1/eaf1-9)。结果表明，光暗交替培养40d时，突变体eaf1均已开花，蒺藜苜蓿r108、geaf1/eaf1-9、geaf1/eaf1-12和geaf1/eaf1-15均未开花。
154.统计各株蒺藜苜蓿的开花时间和开花节数(即第一朵花完全开放时蒺藜苜蓿的生长天数和节数)，然后取平均值。部分统计结果见图4中b(wt为蒺藜苜蓿r108，eaf1为突变体eaf1，**表示具有极显著性差异，p<0.01)。结果表明，与蒺藜苜蓿r108相比，突变体eaf1的开花节数显著减少，开花时间显著提前；geaf1/eaf1-9、geaf1/eaf1-12、geaf1/eaf1-15和蒺藜苜蓿r108的开花节数和开花时间均无显著差异。
155.部分蒺藜苜蓿复叶的正面和背面表型见图5(wt为蒺藜苜蓿r108，eaf1为突变体eaf1，geaf1/eaf1为geaf1/eaf1-9，ad为正面，ab为反面)。结果表明，与蒺藜苜蓿r108相比，突变体eaf1复叶的正面和背面均具有更多的红色斑点；geaf1/eaf1-9、geaf1/eaf1-12、geaf1/eaf1-15和蒺藜苜蓿r108复叶正面和背面的红色斑点数无显著差异。
156.由此可见，互补株(geaf1/eaf1-9、geaf1/eaf1-12和geaf1/eaf1-15)的开花节数和复叶上红色斑点数恢复至与蒺藜苜蓿r108一致。
157.五、互补株叶片中的花青素含量检测
158.按照实施例1中步骤二的方法，检测蒺藜苜蓿r108、突变体eaf1和geaf1/eaf1-9叶片中花青素的含量。
159.检测结果见图6(wt为蒺藜苜蓿r108，eaf1为突变体eaf1，geaf1/eaf1为geaf1/eaf1-9，**表示具有极显著性差异，p<0.01)。结果表明，与蒺藜苜蓿r108相比，突变体eaf1叶片中花青素含量显著提高；geaf1/eaf1-9和蒺藜苜蓿r108叶片中花青素含量无显著差异。
160.由此可见，互补株(geaf1/eaf1-9)的花青素含量恢复至与蒺藜苜蓿r108一致。
161.上述结果表明，eaf1蛋白可以调控花青素的合成、开花节数和开花时间。