实验动物滴鼻器的制作方法

1.本发明涉及兽医领域，具体涉及实验动物滴鼻器。


背景技术：

2.在动物实验过程中，给药途径有很多种，滴鼻给药是普遍的一种给药方式，目前没有专门滴鼻给药的器械，而现有滴鼻器容易导致滴液溢出，或者撑开鼻腔部件容易导致动物鼻腔损伤的问题。


技术实现要素：

3.本发明的目的是为了解决目前实验动物滴鼻器导致药液溢出，损伤动物鼻腔的问题，而提供实验动物滴鼻器。
4.本发明的实验动物滴鼻器，包括注射管和乳胶囊泡；
5.所述的注射管由注射管管体、进气推杆和进液推杆组成；所述的注射管管体外围沿其周向设置有进气槽，进气槽两端开口，所述的进气推杆一端置于进气槽内；所述的进液推杆一端置于注射管的管腔内，且进液推杆的推柄在推进时带动进气推杆的推柄一同推进；
6.所述的乳胶囊泡的前端套设在注射管管体的头部的进气槽上，且进气口与进气槽的出气口连通；
7.所述的注射管前端设置有针管，针管进液口与注射管管体的出液口连通，出液口穿过乳胶囊泡位于乳胶囊泡外部，靠近注射管出液口处的乳胶囊泡上开设有出气口。
8.进一步地，所述的实验动物滴鼻器还设置有限位螺杆和刻度指示杆；所述的注射管管体外管壁上刻有刻度，进气推杆的手柄上连接有限位螺杆的前端设置有刻度指示杆，刻度指示杆前端指示在外管壁上的刻度上；所述的刻度指示杆与注射管管体外管壁相匹配。
9.进一步地，所述的乳胶囊泡内还设置有多个出气口封堵珠。
10.进一步地，所述的乳胶囊泡前后两端开口，针管头部穿过乳胶囊泡的前端开口处，且外壁与乳胶囊泡粘贴在一起，乳胶囊泡后端开口套设于进气槽的出气口外壁上，并与其粘贴在一起，且乳胶囊泡内放置有多个出气口封堵珠。
11.进一步地，所述的出气口封堵珠直径大于出气口直径和进气槽的出气口直径。
12.进一步地，所述的进气推杆的推柄中间处开口，所述的进液推杆末端穿过进气推杆推柄的开口处，置于注射管管体内。
13.进一步地，所述的实验动物为小鼠。
14.本发明包含以下有益效果：
15.本发明采用乳胶囊泡作为动物鼻腔撑大部件，通过软性件的乳胶囊泡鼓气方式将其吹大后，然后支撑鼻腔，使滴鼻液顺利进入到动物鼻腔内，乳胶囊泡与鼻腔内壁周向紧密贴合能够防止滴鼻液溢出，导致药量损失，而且与金属等材质的部件相比，又不会损害鼻
腔。更为主要的是本发明的乳胶囊泡前端开设有出气口，其出气口所出气体方向与滴鼻液的进入鼻腔方向相同，通过控制开口量，使气体吹出的同时，又不会使得乳胶囊泡迅速缩小，保证在注射滴鼻液的同时乳胶囊泡始终与鼻腔内壁周向紧密贴合。而且，所吹出的气体又会推动滴鼻液进入到鼻腔内，减少外流。本发明在注射管外围周向设置进气槽，并在其内设置进气推杆，通过进液推杆的推动带动进气推杆在其内推动使气体进入到乳胶囊泡内，乳胶囊泡迅速鼓胀的同时，滴鼻液也一同进入到鼻腔内，由于进气槽和注射管的腔室长度相似，因此进液推杆和进气推杆几乎同时到达底部，因此，在滴鼻液几乎全部进入到鼻腔内后，进入乳胶囊泡内的气体也几乎完成，此时的乳胶囊泡也逐渐缩小，从而完成滴鼻液的顺利滴入，也防止了滴鼻液的溢出。
16.本发明的方案能够有效解决实验动物滴鼻器导致药液溢出，损伤动物鼻腔的问题，且结构简单，实用性强。
附图说明
17.图1为本发明的实验动物滴鼻器结构示意图；
18.图2为采用实施例1的实验动物滴鼻小鼠滴鼻前后对比照片；其中，每组图中左图均为滴鼻前，右图均为滴鼻后；
19.图3为采用实施例1的实验动物滴鼻小鼠滴鼻后小鼠的空白组、感染组he染色图。
具体实施方式
20.本领域的普通技术人员可以理解，上述各实施方式是实现本发明的具体实施例，而在实际应用中，可以在形式上和细节上对其作各种改变，而不偏离本发明的精神和范围。
21.为使本发明实施例的目的、技术方案和优点更加清楚明白，下面将详细叙述清楚说明本发明所揭示内容的精神，任何所属技术领域技术人员在了解本发明内容的实施例后，当可由本发明内容所教示的技术，加以改变及修饰，其并不脱离本发明内容的精神与范围。
22.本发明的示意性实施例及其说明用于解释本发明，但并不作为对本发明的限定。
23.实施例1
24.本实施例的实验动物滴鼻器，其特征在于包括注射管1和乳胶囊泡2；
25.所述的注射管1由注射管管体11、进气推杆12和进液推杆13组成；所述的注射管管体11外围沿其周向设置有进气槽5，进气槽5两端开口，所述的进气推杆12一端置于进气槽5内；所述的进液推杆13一端置于注射管1的管腔内，且进液推杆13的推柄在推进时带动进气推杆12的推柄一同推进；所述的乳胶囊泡2的前端套设在注射管管体11的头部的进气槽5上，且进气口与进气槽5的出气口连通；
26.所述的注射管1前端设置有针管14，针管14进液口与注射管管体11的出液口连通，出液口穿过乳胶囊泡2位于乳胶囊泡2外部，靠近注射管1出液口处的乳胶囊泡2上开设有出气口21。
27.所述的实验动物滴鼻器还设置有限位螺杆3和刻度指示杆4；所述的注射管管体11外管壁上刻有刻度，进气推杆12的手柄上连接有限位螺杆3的前端设置有刻度指示杆4，刻度指示杆4前端指示在外管壁上的刻度上；所述的刻度指示杆4与注射管管体11外管壁相匹
配。所述的乳胶囊泡2内还设置有多个出气口封堵珠。
28.所述的乳胶囊泡2前后两端开口，针管14头部穿过乳胶囊泡2的前端开口处，且外壁与乳胶囊泡2粘贴在一起，乳胶囊泡2后端开口套设于进气槽5的出气口外壁上，并与其粘贴在一起，且乳胶囊泡2内放置有多个出气口封堵珠。
29.所述的出气口封堵珠直径大于出气口21直径和进气槽5的出气口直径。
30.所述的进气推杆12的推柄中间处开口，所述的进液推杆13末端穿过进气推杆12推柄的开口处，置于注射管管体11内。
31.采用本实施例的滴鼻器针对小鼠进行滴鼻后，观察其滴鼻效果，结果显示并没有发现滴鼻液的溢出，也没有鼻腔损伤发生。
32.1材料与方法
33.1.1主要测试仪器
34.实施例1的实验动物滴鼻器
35.1.2动物
36.20只balb/c小鼠体质量18
‑
22g，雌雄各半，哈尔滨医科大学实验动物学部提供,许可证号scxk(黑)2019
‑
001。
37.1.3主要试剂
38.肺炎支原体标准株(atcc15531)购自americantypeculturecollection,培养在胎牛血清中24h后，放于含20％胎牛血清，10％酵母的pplo培养基中生长,每隔7d传代一次。pplo培养基(becton,dickinson and company，usa)；酵母(安琪酵母股份有限公司)；胎牛血清(gibco,usa)；苏木素、伊红染液(南京建成公司)；生理盐水。
39.1.4主要仪器设备
40.kd
‑
ts3a自动组织脱水机(浙江金华科迪仪器设备有限公司)；kd
‑
bm生物组织包埋机(浙江金华科迪仪器设备有限公司)；rm2235组织切片机(德国莱卡)；bx4
‑
1生物显微镜(olympus公司)；mdf
‑
382e
‑
80℃低温冰箱(日本sanyo公司)；st
‑
16r型低温高速离心机(美国thermofisher scientific公司；lxj
‑
n型普通低速离心机(上海医用分析仪器厂)20ul、200ul、1000ul微量加样器(eppendoff公司)；bp211d分析天平(sartorius公司)。
41.1.5方法
42.1.5.1主要用滴鼻器建立动物模型:20只20～22g的balb/c小鼠，随机分为2组，感染组(肺炎支原体感染)10只，空白组10只。感染组小鼠乙醚麻醉,实验动物滴鼻器吸取20ul10ccu/ml肺炎支原体液,抓取小鼠通过小鼠滴鼻器注射鼻腔吸入液体,连续3d。空白组则用实验动物滴鼻器，吸入同体积的mp液体培养基。结束后将小鼠断髓处死，分离肺组织，左肺组织10％甲醛固定，用于he染色。实验重复3次。
43.1.5.2he染色:检测组织结构改变的最常规方法。肺组织放于10％甲醛中固定48h以上脱水、透明、包埋、切片、脱蜡、水化后，用苏木素和伊红染色，脱水,中性树胶进行封片。肺组织切片he染色细胞核被染成蓝色细胞质、结缔组织和肌肉等均被染成不同程度的红色在光学显微镜下观察肺组织病理的变化。病理评分为0(没有改变)
‑
16(最大改变),按毛细支气管炎、血管周围炎、间质性肺炎和肺泡炎从轻到重定为1
‑
4分。
44.2结果
45.2.1滴鼻过程中未有液体药品流出，保证药品全部注射进鼻腔内；滴鼻后观察小鼠
鼻腔，排除药物刺激外，未对小鼠鼻腔造成损伤。见图2。
46.2.2肺组织病理检查
47.he染色显示空白组小鼠肺组织形态无异常改变，结构清楚，肺泡腔完整,排列规则,无炎细胞浸润。感染组小鼠肺组织上皮细胞脱落，支气管间隙增厚肺泡壁毛细血管中有过量的红细胞肺泡壁与间隔有大量炎性细胞浸润,肺泡壁塌陷，可发生灶性肺不张。见图3。
48.3讨论
49.实验结果表明，使用实验动物滴鼻器对小鼠进行滴鼻造模，he染色证明对其造模成功，说明药物进入小鼠肺部对其进行感染，且未有对鼻腔有损伤，大大减少了造模期间其他客观因素对造模产生的影响。实验动物滴鼻器在实验动物滴鼻造模过程中起到了很大的作用，药物的准确到达，精准无误差，对实验动物损伤降到最低，不影响实验动物的客观环境外在影响因素。