专利名称：制备干扰素α-2晶体的方法
人干扰素α是一类至少包含24个亚种的蛋白(Zoon K.C.，Interferon9∶1-12，1987，Gresser I.编，Academic Press，New York)。它们原来被描述为能够在细胞内诱导抗病毒状态的药剂，但现在被称为影响免疫系统许多功能的多效性淋巴激活素(Opdenakker等，Experimentia 45∶513-520，1989)。除了其体外生物活性外，人干扰素α目前用于几种重要的指征，例如毛细胞性白血病、卡波济肉瘤、尖锐湿疣等，并正在研究将其用于其他几种指征(Intron A(干扰素α-2b)Clinical Status(1989))。这是从1989年9月在英国伦敦召开的第五届欧洲临床肿瘤学大会的一个附属讨论会上得来的进展。对结构的阐明及各种剂型的配制来说，最为重要的是要得到高度纯化的结晶态干扰素α，尤其是重组型α-2b。
现已报道了两种形式的结晶人干扰素α-2(Miller等，Science 215689-690，1982;Kung等，美国专利4，672，108;Weissmann，“干扰素的克隆及其它错误”，Interferon 1981，Ion Gresser编，Academic Press，New York，101-134;Weissmann，Phil.Trans.R.Soc.Lond.，B2997-28，1982;Nagabhusban等，“遗传工程α-2干扰素的定性鉴定”，InterferonResearch，Clinical Application and RegulatoryConsideration，Zoon等编，Elsevier，New York79-88，1982)。这些出版物叙述了在低温下从聚乙二醇中结晶干扰素α-2的方法，或者通过调节PH或温度而从磷酸盐缓冲液中结晶干扰素α-2的方法。通常用这些方法得到的针状结晶，用X射线衍射技术难以准确鉴定其特性。Miller等人的文章还提到了“棱状”结晶干扰素α-2。
一般来说，对干扰素这样的蛋白质进行结晶的方法是无法预言的。例如，Kung等人的美国专利4，672，108(1987)在第1栏第52-64行特别指出“现已建立了多种蛋白质结晶技术，但尚未发现通用的方法，因此许多蛋白质仍未结晶出来。所以，蛋白质的结晶是一门无法预言的技术，需要对许多可供选择的可能方法作反复试验。
应用最为广泛的方法之一，涉及在蛋白质溶液中加入一种结晶剂，通常是一种盐(例如硫酸铵或柠檬酸铵)或一种有机溶剂(例如乙醇或2-乙基-2，4-戊二醇)。但这些方法并未提供生产人白细胞干扰素结晶的合适手段。”(加了着重号。)我们现已意外地发现了一种即使在室温下也能有效地产生高质量结晶干扰素α-2的方法，该方法包括使干扰素α-2的溶液与一种硫酸盐溶液平衡，使干扰素α-2溶液变得更浓，从而形成干扰素α-2结晶。最好利用超滤法或透析法，或采用液滴(如悬滴或夹滴)来实现平衡。
干扰素α-2的溶液最好含有一种硫酸盐，并且该溶液最好与浓度更高的硫酸盐溶液平衡。该硫酸盐优选铵盐、钙盐、镉盐、钾盐、锂盐、镁盐或钠盐，更为优选的是硫酸铵。开始形成结晶时硫酸盐在结晶干扰素α-2溶液中的浓度最好为约12%至30%饱和，更为优选的是浓度为约15%至25%饱和的硫酸铵。如下面所指出的，平衡步骤开始时硫酸盐的浓度较低，即约2%至18%饱和。
优选的干扰素α-2为干扰素α-2b，更为优选的是人的重组结晶干扰素α-2b。在一个实施方案中，结晶物为具有如下所示氨基酸顺序的干扰素α-2b
也可采用干扰素α-2a。干扰素α-2a的一级氨基酸顺序与上述干扰素α-2b顺序的不同之处在于，23位残基处由赖氨酸置换了精氨酸。
干扰素α-2的硫酸盐溶液最好含有一种缓冲液，其pH为6.5至8.5，较为优选的是7.3至8.0，例如磷酸钠缓冲液。
由上述方法制得的结晶干扰素α-2可作为晶种而用于制备另一批结晶干扰素α-2。
如前面所指出的，本发明的方法包括使干扰素α-2的硫酸盐溶液与一种硫酸盐溶液平衡，使结晶干扰素α-2溶液变得更浓，从而形成干扰素α-2结晶。可以采用任何适宜的干扰素α-2，例如干扰素α-2a和干扰素α-2b，更为优选的是人的重组干扰素α-2a(r-h-干扰素α-2a)或干扰素α-2b(r-h-干扰素α-2b)。商品α-2干扰素制剂可从Hoffmann-La Roche公司(Roferon )和先灵公司(Intron A)得到。含有各种α-2干扰素的纯净干扰素混合物可从Burroughs-Wellcome公司(Wellferon )得到。鉴于人干扰素α中有高度的顺序同源性，本发明的方法应对每一亚种都适用。
人干扰素α-2各亚种可通过重组DNA技术来制取，也可以从天然来源(如人外周血淋巴细胞、人类淋巴母细胞系)纯化，例如如Pestka等人所述(Ann.Rev.Biochem.，56∶727-777，1987)。优选的干扰素α-2是具有上述氨基酸顺序的r-h-干扰素α-2b。
天然人干扰素α已从若干细胞来源中纯化出来，其中包括从全血中分离出的白细胞、新生成纤维细胞、类淋巴母细胞及各种白血病细胞系。首先应用于临床的人白细胞干扰素制剂是由芬兰的K.Cantell及其同事研制的，他们的方法是将取自正常供血者的血液离心后注入干扰素，加入仙台病毒进行诱导并离心。所得上清液用硫氰酸钾沉淀，用乙醇提取，经pH沉淀后对磷酸盐缓冲液透析(K.E.Morgensen，L.Cantell，Pharmacol.Ther.1∶369-381，1977)。
重组干扰素α已由几个研究小组克隆出来并在大肠杆菌中表达(例如C.Weissmann等，Science 209∶1343-1349，1980)。有几个研究小组描述了纯化重组α-2干扰素的方法，该方法配合使用了一些层析步骤，例如硫酸铵沉淀、染料亲和层析、离子交换和凝胶过滤，例如如Weissmann，C.所述(Phil.R.Soc.(Lond)，b299∶7-28，1982)。另一种纯化重组干扰素α的方法采用了免疫亲和层析法和固定化抗体(P.P.Trotta等，Developments in Industrial Microbiology，72∶53-64，Elsevier，Amsterdam)。有关用于重组α干扰素的现有纯化方案的综述，参见T.L.Nagabhushan和P.P.Trotta，《Ullmann工业化学大全》，A14，VCH，Weinheim(联邦德国)，372-374，1989。所用的干扰素α-2b最好用该综述所述的常规纯化方法纯化，然后进行反相高效层析。
适宜的平衡方法包括透析、超滤，例如透滤，或者利用液滴，例如悬滴或夹滴。可以用浓度高于干扰素α-2的硫酸盐溶液的另一种硫酸盐溶液实现平衡。一种特别优选的方法是使r-h-干扰素α-2的溶液与使用磷酸盐缓冲液的硫酸盐溶液平衡。平衡过程最好缓慢进行，例如长达2-30天。
大规模的结晶可以用相当于蒸气扩散的方法来进行，即利用透析和超滤。在临床制备过程中，可以利用大规模结晶作为纯化或浓缩步骤。此外，在这种操作中可以用其它常用硫酸盐代替硫酸铵。
结晶时，即首次出现结晶时，干扰素α-2在硫酸盐溶液中的终浓度可为约10-80毫克/毫升。更为优选的是，干扰素α-2的浓度为约30-50毫克/毫升。干扰素α-2的起始浓度最好为约20毫克/毫升。
在结晶步骤开始前的起始阶段，干扰素α-2溶液中硫酸盐的浓度可为约2%-18%饱和，即，硫酸盐的浓度为溶液达100%饱和时浓度的2-18%。更为优选的是，干扰素α-2溶液中硫酸盐的浓度为约7%-15%饱和。结晶步骤开始时抗衡溶液中硫酸盐的浓度为约12-30%饱和，更为优选的是约15-25%饱和。
干扰素α-2溶液和抗衡硫酸盐溶液的pH最好控制在约6.5-8.5的范围，更优选的是约7.3-8.0。为此可采用任何合适的缓冲剂。例如可以采用磷酸钠、三(羟甲基)氨基甲烷盐酸盐或N-(2-羟乙基)哌嗪-N′-(2-乙磺酸)缓冲剂。
结晶过程最好在控温条件下进行。温度最好在约15℃-37℃的范围内，更为优选的是约18℃-25℃。
由于本发明意外地在室温下产生结晶干扰素α-2，所以与在4℃下用聚乙二醇得到的晶体相比具有突出的优点。现在已经有可能在室温下贮存和配制人干扰素α-2晶体。用加有0.15M氯化钠的20mM磷酸钠(pH7.5)缓冲液透析可以使该晶体溶解。此外，由于硫酸盐溶液比聚乙二醇更容易用透析等方法除去，可以在重新溶解后用本发明的方法得到更纯的干扰素α-2结晶。
用本发明方法制得的结晶干扰素α-2将构成各种药物制剂的基础。例如，该结晶干扰素可应用于缓释制剂。例如能够以相当于0.1-1.0微克/千克体重的日剂量释放的贮库制剂。采用用本发明方法制得的晶体的贮库制剂，其溶解速度应大大低于含有在4℃下制得的晶体的制剂。特别是，室温(22℃)晶体的温度敏感性应低于要求较低结晶温度的晶体。
此外，可以使人干扰素α-2与金属形成配合物，然后再用本发明的方法结晶。这样一种配合物的结晶同样可以用于缓释制剂。用于缓释制剂中的金属离子-蛋白配合物的例子在先有技术中已有描述。转让给Novo Terapeutisk Laboratorium A/S的美国专利2，882，203，描述了将氯化锌加入无菌胰岛素溶液中而制得的锌和胰岛素的配合物。这种配合物的结晶悬浮液的作用时间比非结晶制剂长4-6倍(《Remington药物学》，Gennaro，A.R.编，Mack Publishing Co.，Easton，Penn.17∶975-976，1985)。许多制造厂家以不同的形式销售锌-胰岛素配合物，例如长效胰岛素(Squibb)、超长效胰岛素(Lilly)和超长效胰岛素/超缓(Squibb-Novo)(出处同上)。鱼精蛋白锌胰岛素是胰岛素(锌-胰岛素)和一种碱性蛋白(Salmiridin)的结晶产物。该产物以几个不同的商品名制造NPN-Iletin(Lilly)、Insulated(Leo)和Novolin N(Squibb-Novo)(《制药大全》，Sittig，M.编，1∶820-822，1988)。可以用美国专利2，882，203所述的方法形成锌-干扰素α-2配合物。可用本发明的方法使干扰素α-2-锌配合物结晶。用适当的添加剂(如对羟基苯甲酸甲酯、氯化钠和乙酸钠)配成的结晶悬浮液(含有大小均匀的晶体)可用于皮下注射。
用本发明的方法制备的结晶干扰素α-2，可以按与现有的干扰素α-2材料用于药物制剂时的方式大体相同的方式使用，例如制成干扰素α-2的贮库制剂，这种制剂可设计成结晶干扰素α-2的日剂量为约0.1-1.0微克/千克。这种制剂含有生理有效量的结晶干扰素α-2及常规药用载体。
这里所公开的发明用下列实施例来举例说明，但不应误认为是限制发明范围。本发明范围内的另一些方法对本领域技术人员来说也将是显而易见的。
所采用的干扰素α-2为如Weissmann等人所述(Science2091343，1980)在大肠杆菌中表达的重组人干扰素α-2b。按照Leibowitz，P.等人的美国专利4，315，852(1982)以前所报道的方法对细胞进行培养、收集和提取。所得到的提取液用一系列常规纯化步骤进行纯化乙醇提取、基质凝胶蓝色配体亲和层析、离子交换和凝胶过滤层析。所得到的纯化干扰素α-2b制备物用反相HPLC法用Rainin Auto Prep层析系统进一步纯化。纯化出的干扰素α-2b(50毫克)在Rainin(4.1×250厘米)C4300埃柱上进行层析，该柱已预先用27%乙腈、0.1%三氟乙酸(TFA)平衡。用27%-72%乙腈、0.1%TFA的线性梯度以40毫升/分洗脱30分钟，从柱中洗脱出干扰素α-2b。用一台串联的Knauer紫外检测器在280纳米处进行检测，根据所得出的光吸收曲线收集洗脱出的各部分。
采用悬滴、落滴或夹滴技术，用蒸气扩散法实现结晶。悬滴蒸气扩散实验在24孔组织培养皿(Becton Dickinson公司，Lincoln park，NJ)中进行。夹滴实验在蛋白质结晶皿Crystalplate(Flow Laboratories，McLean，VA)中进行。落滴蒸气扩散实验在MVD/24多室蒸气扩散皿(Crychem公司，Riverside，CA)中进行。
进行悬滴实验时，取10微升含有20毫克/毫升蛋白质、10%水饱和的硫酸铵、40mM磷酸钠(pH8.0)的液滴，使其从扣在Linbro组织培养皿上的硅化盖玻片上悬下。使这些液滴与1毫升20%饱和的硫酸铵、40mM磷酸钠(pH8.0)平衡。在22℃下保温4-15天后出现棱状大单斜晶(0.5×0.5×0.5毫米)。用类似的溶液和实验条件进行落滴和夹滴实验。这些晶体在进行X射线衍射分析时很稳定，衍射分辨率为6
。用不同批次的晶体进行X射线分析得到一致的形态学结果。这是首次报道干扰素α-2的X射线衍射图案。
进行X射线研究时，把晶体装在玻璃毛细管中，在22℃下用回摆相机利用由Rigaku RU-300旋转阳极发生器发出的CuKα辐射进行拍照，阳极发生器的操作电压为40kV，电流为100mA。在Nicolet X-100A特定范围放射线检测器上用相同的辐射源读取原始数据。
定性鉴定1.生物测定用注射器从悬滴中吸出分散的结晶，然后在22℃下重新悬浮于100微升由35%饱和的硫酸铵、40mM磷酸钠(pH8.0)组成的洗涤液中。将该悬浮液离心，用巴氏吸管吸出洗涤液。将洗涤过的结晶在22℃下重新溶解于100微升20mM磷酸钠(pH7.5)、0.15M氯化钠中。
用经过修改的Bradford测定法测定蛋白质，用纯净的人干扰素α-2b作参考标准。用细胞病抑制测定法，利用人包皮二倍体成纤维细胞和脑心肌炎病毒(ATCC-VR-129)测定抗病毒活性。该测定法的详细叙述见S.Rubinstein、P.C.Familletti和S.Pestka，J.Virol.37∶755-758，1981。重新溶解后得到的溶液的比活为2.0×108国际单位/毫克。此数值在该测定法的误差范围内与对结晶前的原始干扰素α-2b制备物所预计的数值相同(一般在1×108-3×108国际单位/毫克范围内)。
2.HPLC对一个重新溶解的干扰素晶体样品进行分析高效液相层析(HPLC)(Waters Ass.Milford，MA)。将样品加到Rainin Dynamax C4300埃柱(4.6×250毫米)上，然后用含0.1%三氟乙酸的27-72%乙腈线性梯度洗脱30分钟。用灵敏度为0.02吸收单位的Gilson可变波长检测器在280纳米处监测流出液。重新溶解的晶体溶液和结晶前的原始干扰素α-2b制备物的保留时间和层析图谱都相同。
3.SDS-PAGE分析用Laemmli，U.K.(Nature 227∶680，1970)所述的单向15%十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳法(SDS-PAGE)，对结晶前后的干扰素α-2b进行比较。当样品在同一凝胶上的平行泳道中进行比较时，相对迁移率没有变化。
由以上的1、2和3可以明显看出，没有任何理由认为蛋白质在结晶或再生过程中发生了任何化学变化或任何变性。
虽然已结合上述具体实施方案叙述了本发明，但许多变换、修改和变动对本领域普通技术人员来说都将是显而易见的。所有这些变换、修改和变动都将落在本发明的要旨和范围内。
权利要求
1.一种制备结晶干扰素α-2的方法，该方法包括使含有干扰素α-2的硫酸盐溶液与一种硫酸盐溶液平衡，使干扰素α-2溶液变得更浓，从而形成干扰素α-2结晶。
2.权利要求1的方法，其特征在于，所述平衡借助超滤或透析或用蒸气扩散法来实现。
3.权利要求1或2的方法，其特征在于，所述平衡用蒸气扩散法利用悬滴或夹滴来实现。
4.权利要求1-3中任一项的方法，其特征在于，使干扰素α-2的硫酸盐溶液与浓度更高的硫酸盐溶液平衡。
5.权利要求1-4中任一项的方法，其特征在于，干扰素α-2为人的重组干扰素α-2b。
6.权利要求5的方法，其特征在于，硫酸盐选自铵盐、钙盐、镉盐、钾盐、锂盐、镁盐或钠盐。
7.权利要求5的方法，其特征在于，硫酸盐为硫酸铵。
8.权利要求5的方法，其特征在于，干扰素α-2的硫酸盐溶液含有缓冲剂。
9.权利要求8的方法，其特征在于，干扰素α-2溶液缓冲至pH为7.3-8.0。
10.权利要求9的方法，其特征在于，缓冲剂为磷酸钠。
11.权利要求10的方法，其特征在于，形成干扰素α-2结晶时，干扰素α-2溶液中硫酸盐的浓度为约12%-30%饱和。
12.权利要求10的方法，其特征在于，形成干扰素α-2结晶时，干扰素α-2溶液中硫酸盐的浓度为约15%-25%饱和。
13.使干扰素α-2结晶的方法，其特征在于，用权利要求1的方法得到的晶体作晶种。
14.一种贮库制剂，它包含干扰素α-2晶体与一种药用贮库剂载体配伍。
15.根据权利要求14的制剂，其特征在于，干扰素α-2晶体为金属或鱼精蛋白配合物的形式。
16.根据权利要求15的制剂，其特征在于，金属配合物为锌配合物。
全文摘要
公开了一种制备干扰素α-2晶体的方法及其在贮库制剂中的应用。
文档编号C07K1/14GK1058022SQ9110368
公开日1992年1月22日 申请日期1991年6月4日 优先权日1990年6月4日
发明者保罗·赖歇特, 杰拉尔德·S·哈蒙德, 洪·V·李, 塔坦纳哈里·L·纳加布胡山, 保罗·P·特罗塔 申请人:先灵公司
人干扰素α是一类至少包含24个亚种的蛋白(Zoon K.C.，Interferon9∶1-12，1987，Gresser I.编，Academic Press，New York)。它们原来被描述为能够在细胞内诱导抗病毒状态的药剂，但现在被称为影响免疫系统许多功能的多效性淋巴激活素(Opdenakker等，Experimentia 45∶513-520，1989)。除了其体外生物活性外，人干扰素α目前用于几种重要的指征，例如毛细胞性白血病、卡波济肉瘤、尖锐湿疣等，并正在研究将其用于其他几种指征(Intron A(干扰素α-2b)Clinical Status(1989))。这是从1989年9月在英国伦敦召开的第五届欧洲临床肿瘤学大会的一个附属讨论会上得来的进展。对结构的阐明及各种剂型的配制来说，最为重要的是要得到高度纯化的结晶态干扰素α，尤其是重组型α-2b。
现已报道了两种形式的结晶人干扰素α-2(Miller等，Science 215689-690，1982;Kung等，美国专利4，672，108;Weissmann，“干扰素的克隆及其它错误”，Interferon 1981，Ion Gresser编，Academic Press，New York，101-134;Weissmann，Phil.Trans.R.Soc.Lond.，B2997-28，1982;Nagabhusban等，“遗传工程α-2干扰素的定性鉴定”，InterferonResearch，Clinical Application and RegulatoryConsideration，Zoon等编，Elsevier，New York79-88，1982)。这些出版物叙述了在低温下从聚乙二醇中结晶干扰素α-2的方法，或者通过调节PH或温度而从磷酸盐缓冲液中结晶干扰素α-2的方法。通常用这些方法得到的针状结晶，用X射线衍射技术难以准确鉴定其特性。Miller等人的文章还提到了“棱状”结晶干扰素α-2。
一般来说，对干扰素这样的蛋白质进行结晶的方法是无法预言的。例如，Kung等人的美国专利4，672，108(1987)在第1栏第52-64行特别指出“现已建立了多种蛋白质结晶技术，但尚未发现通用的方法，因此许多蛋白质仍未结晶出来。所以，蛋白质的结晶是一门无法预言的技术，需要对许多可供选择的可能方法作反复试验。
应用最为广泛的方法之一，涉及在蛋白质溶液中加入一种结晶剂，通常是一种盐(例如硫酸铵或柠檬酸铵)或一种有机溶剂(例如乙醇或2-乙基-2，4-戊二醇)。但这些方法并未提供生产人白细胞干扰素结晶的合适手段。”(加了着重号。)我们现已意外地发现了一种即使在室温下也能有效地产生高质量结晶干扰素α-2的方法，该方法包括使干扰素α-2的溶液与一种硫酸盐溶液平衡，使干扰素α-2溶液变得更浓，从而形成干扰素α-2结晶。最好利用超滤法或透析法，或采用液滴(如悬滴或夹滴)来实现平衡。
干扰素α-2的溶液最好含有一种硫酸盐，并且该溶液最好与浓度更高的硫酸盐溶液平衡。该硫酸盐优选铵盐、钙盐、镉盐、钾盐、锂盐、镁盐或钠盐，更为优选的是硫酸铵。开始形成结晶时硫酸盐在结晶干扰素α-2溶液中的浓度最好为约12%至30%饱和，更为优选的是浓度为约15%至25%饱和的硫酸铵。如下面所指出的，平衡步骤开始时硫酸盐的浓度较低，即约2%至18%饱和。
优选的干扰素α-2为干扰素α-2b，更为优选的是人的重组结晶干扰素α-2b。在一个实施方案中，结晶物为具有如下所示氨基酸顺序的干扰素α-2b
也可采用干扰素α-2a。干扰素α-2a的一级氨基酸顺序与上述干扰素α-2b顺序的不同之处在于，23位残基处由赖氨酸置换了精氨酸。
干扰素α-2的硫酸盐溶液最好含有一种缓冲液，其pH为6.5至8.5，较为优选的是7.3至8.0，例如磷酸钠缓冲液。
由上述方法制得的结晶干扰素α-2可作为晶种而用于制备另一批结晶干扰素α-2。
如前面所指出的，本发明的方法包括使干扰素α-2的硫酸盐溶液与一种硫酸盐溶液平衡，使结晶干扰素α-2溶液变得更浓，从而形成干扰素α-2结晶。可以采用任何适宜的干扰素α-2，例如干扰素α-2a和干扰素α-2b，更为优选的是人的重组干扰素α-2a(r-h-干扰素α-2a)或干扰素α-2b(r-h-干扰素α-2b)。商品α-2干扰素制剂可从Hoffmann-La Roche公司(Roferon )和先灵公司(Intron A)得到。含有各种α-2干扰素的纯净干扰素混合物可从Burroughs-Wellcome公司(Wellferon )得到。鉴于人干扰素α中有高度的顺序同源性，本发明的方法应对每一亚种都适用。
人干扰素α-2各亚种可通过重组DNA技术来制取，也可以从天然来源(如人外周血淋巴细胞、人类淋巴母细胞系)纯化，例如如Pestka等人所述(Ann.Rev.Biochem.，56∶727-777，1987)。优选的干扰素α-2是具有上述氨基酸顺序的r-h-干扰素α-2b。
天然人干扰素α已从若干细胞来源中纯化出来，其中包括从全血中分离出的白细胞、新生成纤维细胞、类淋巴母细胞及各种白血病细胞系。首先应用于临床的人白细胞干扰素制剂是由芬兰的K.Cantell及其同事研制的，他们的方法是将取自正常供血者的血液离心后注入干扰素，加入仙台病毒进行诱导并离心。所得上清液用硫氰酸钾沉淀，用乙醇提取，经pH沉淀后对磷酸盐缓冲液透析(K.E.Morgensen，L.Cantell，Pharmacol.Ther.1∶369-381，1977)。
重组干扰素α已由几个研究小组克隆出来并在大肠杆菌中表达(例如C.Weissmann等，Science 209∶1343-1349，1980)。有几个研究小组描述了纯化重组α-2干扰素的方法，该方法配合使用了一些层析步骤，例如硫酸铵沉淀、染料亲和层析、离子交换和凝胶过滤，例如如Weissmann，C.所述(Phil.R.Soc.(Lond)，b299∶7-28，1982)。另一种纯化重组干扰素α的方法采用了免疫亲和层析法和固定化抗体(P.P.Trotta等，Developments in Industrial Microbiology，72∶53-64，Elsevier，Amsterdam)。有关用于重组α干扰素的现有纯化方案的综述，参见T.L.Nagabhushan和P.P.Trotta，《Ullmann工业化学大全》，A14，VCH，Weinheim(联邦德国)，372-374，1989。所用的干扰素α-2b最好用该综述所述的常规纯化方法纯化，然后进行反相高效层析。
适宜的平衡方法包括透析、超滤，例如透滤，或者利用液滴，例如悬滴或夹滴。可以用浓度高于干扰素α-2的硫酸盐溶液的另一种硫酸盐溶液实现平衡。一种特别优选的方法是使r-h-干扰素α-2的溶液与使用磷酸盐缓冲液的硫酸盐溶液平衡。平衡过程最好缓慢进行，例如长达2-30天。
大规模的结晶可以用相当于蒸气扩散的方法来进行，即利用透析和超滤。在临床制备过程中，可以利用大规模结晶作为纯化或浓缩步骤。此外，在这种操作中可以用其它常用硫酸盐代替硫酸铵。
结晶时，即首次出现结晶时，干扰素α-2在硫酸盐溶液中的终浓度可为约10-80毫克/毫升。更为优选的是，干扰素α-2的浓度为约30-50毫克/毫升。干扰素α-2的起始浓度最好为约20毫克/毫升。
在结晶步骤开始前的起始阶段，干扰素α-2溶液中硫酸盐的浓度可为约2%-18%饱和，即，硫酸盐的浓度为溶液达100%饱和时浓度的2-18%。更为优选的是，干扰素α-2溶液中硫酸盐的浓度为约7%-15%饱和。结晶步骤开始时抗衡溶液中硫酸盐的浓度为约12-30%饱和，更为优选的是约15-25%饱和。
干扰素α-2溶液和抗衡硫酸盐溶液的pH最好控制在约6.5-8.5的范围，更优选的是约7.3-8.0。为此可采用任何合适的缓冲剂。例如可以采用磷酸钠、三(羟甲基)氨基甲烷盐酸盐或N-(2-羟乙基)哌嗪-N′-(2-乙磺酸)缓冲剂。
结晶过程最好在控温条件下进行。温度最好在约15℃-37℃的范围内，更为优选的是约18℃-25℃。
由于本发明意外地在室温下产生结晶干扰素α-2，所以与在4℃下用聚乙二醇得到的晶体相比具有突出的优点。现在已经有可能在室温下贮存和配制人干扰素α-2晶体。用加有0.15M氯化钠的20mM磷酸钠(pH7.5)缓冲液透析可以使该晶体溶解。此外，由于硫酸盐溶液比聚乙二醇更容易用透析等方法除去，可以在重新溶解后用本发明的方法得到更纯的干扰素α-2结晶。
用本发明方法制得的结晶干扰素α-2将构成各种药物制剂的基础。例如，该结晶干扰素可应用于缓释制剂。例如能够以相当于0.1-1.0微克/千克体重的日剂量释放的贮库制剂。采用用本发明方法制得的晶体的贮库制剂，其溶解速度应大大低于含有在4℃下制得的晶体的制剂。特别是，室温(22℃)晶体的温度敏感性应低于要求较低结晶温度的晶体。
此外，可以使人干扰素α-2与金属形成配合物，然后再用本发明的方法结晶。这样一种配合物的结晶同样可以用于缓释制剂。用于缓释制剂中的金属离子-蛋白配合物的例子在先有技术中已有描述。转让给Novo Terapeutisk Laboratorium A/S的美国专利2，882，203，描述了将氯化锌加入无菌胰岛素溶液中而制得的锌和胰岛素的配合物。这种配合物的结晶悬浮液的作用时间比非结晶制剂长4-6倍(《Remington药物学》，Gennaro，A.R.编，Mack Publishing Co.，Easton，Penn.17∶975-976，1985)。许多制造厂家以不同的形式销售锌-胰岛素配合物，例如长效胰岛素(Squibb)、超长效胰岛素(Lilly)和超长效胰岛素/超缓(Squibb-Novo)(出处同上)。鱼精蛋白锌胰岛素是胰岛素(锌-胰岛素)和一种碱性蛋白(Salmiridin)的结晶产物。该产物以几个不同的商品名制造NPN-Iletin(Lilly)、Insulated(Leo)和Novolin N(Squibb-Novo)(《制药大全》，Sittig，M.编，1∶820-822，1988)。可以用美国专利2，882，203所述的方法形成锌-干扰素α-2配合物。可用本发明的方法使干扰素α-2-锌配合物结晶。用适当的添加剂(如对羟基苯甲酸甲酯、氯化钠和乙酸钠)配成的结晶悬浮液(含有大小均匀的晶体)可用于皮下注射。
用本发明的方法制备的结晶干扰素α-2，可以按与现有的干扰素α-2材料用于药物制剂时的方式大体相同的方式使用，例如制成干扰素α-2的贮库制剂，这种制剂可设计成结晶干扰素α-2的日剂量为约0.1-1.0微克/千克。这种制剂含有生理有效量的结晶干扰素α-2及常规药用载体。
这里所公开的发明用下列实施例来举例说明，但不应误认为是限制发明范围。本发明范围内的另一些方法对本领域技术人员来说也将是显而易见的。
所采用的干扰素α-2为如Weissmann等人所述(Science2091343，1980)在大肠杆菌中表达的重组人干扰素α-2b。按照Leibowitz，P.等人的美国专利4，315，852(1982)以前所报道的方法对细胞进行培养、收集和提取。所得到的提取液用一系列常规纯化步骤进行纯化乙醇提取、基质凝胶蓝色配体亲和层析、离子交换和凝胶过滤层析。所得到的纯化干扰素α-2b制备物用反相HPLC法用Rainin Auto Prep层析系统进一步纯化。纯化出的干扰素α-2b(50毫克)在Rainin(4.1×250厘米)C4300埃柱上进行层析，该柱已预先用27%乙腈、0.1%三氟乙酸(TFA)平衡。用27%-72%乙腈、0.1%TFA的线性梯度以40毫升/分洗脱30分钟，从柱中洗脱出干扰素α-2b。用一台串联的Knauer紫外检测器在280纳米处进行检测，根据所得出的光吸收曲线收集洗脱出的各部分。
采用悬滴、落滴或夹滴技术，用蒸气扩散法实现结晶。悬滴蒸气扩散实验在24孔组织培养皿(Becton Dickinson公司，Lincoln park，NJ)中进行。夹滴实验在蛋白质结晶皿Crystalplate(Flow Laboratories，McLean，VA)中进行。落滴蒸气扩散实验在MVD/24多室蒸气扩散皿(Crychem公司，Riverside，CA)中进行。
进行悬滴实验时，取10微升含有20毫克/毫升蛋白质、10%水饱和的硫酸铵、40mM磷酸钠(pH8.0)的液滴，使其从扣在Linbro组织培养皿上的硅化盖玻片上悬下。使这些液滴与1毫升20%饱和的硫酸铵、40mM磷酸钠(pH8.0)平衡。在22℃下保温4-15天后出现棱状大单斜晶(0.5×0.5×0.5毫米)。用类似的溶液和实验条件进行落滴和夹滴实验。这些晶体在进行X射线衍射分析时很稳定，衍射分辨率为6
。用不同批次的晶体进行X射线分析得到一致的形态学结果。这是首次报道干扰素α-2的X射线衍射图案。
进行X射线研究时，把晶体装在玻璃毛细管中，在22℃下用回摆相机利用由Rigaku RU-300旋转阳极发生器发出的CuKα辐射进行拍照，阳极发生器的操作电压为40kV，电流为100mA。在Nicolet X-100A特定范围放射线检测器上用相同的辐射源读取原始数据。
定性鉴定1.生物测定用注射器从悬滴中吸出分散的结晶，然后在22℃下重新悬浮于100微升由35%饱和的硫酸铵、40mM磷酸钠(pH8.0)组成的洗涤液中。将该悬浮液离心，用巴氏吸管吸出洗涤液。将洗涤过的结晶在22℃下重新溶解于100微升20mM磷酸钠(pH7.5)、0.15M氯化钠中。
用经过修改的Bradford测定法测定蛋白质，用纯净的人干扰素α-2b作参考标准。用细胞病抑制测定法，利用人包皮二倍体成纤维细胞和脑心肌炎病毒(ATCC-VR-129)测定抗病毒活性。该测定法的详细叙述见S.Rubinstein、P.C.Familletti和S.Pestka，J.Virol.37∶755-758，1981。重新溶解后得到的溶液的比活为2.0×108国际单位/毫克。此数值在该测定法的误差范围内与对结晶前的原始干扰素α-2b制备物所预计的数值相同(一般在1×108-3×108国际单位/毫克范围内)。
2.HPLC对一个重新溶解的干扰素晶体样品进行分析高效液相层析(HPLC)(Waters Ass.Milford，MA)。将样品加到Rainin Dynamax C4300埃柱(4.6×250毫米)上，然后用含0.1%三氟乙酸的27-72%乙腈线性梯度洗脱30分钟。用灵敏度为0.02吸收单位的Gilson可变波长检测器在280纳米处监测流出液。重新溶解的晶体溶液和结晶前的原始干扰素α-2b制备物的保留时间和层析图谱都相同。
3.SDS-PAGE分析用Laemmli，U.K.(Nature 227∶680，1970)所述的单向15%十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳法(SDS-PAGE)，对结晶前后的干扰素α-2b进行比较。当样品在同一凝胶上的平行泳道中进行比较时，相对迁移率没有变化。
由以上的1、2和3可以明显看出，没有任何理由认为蛋白质在结晶或再生过程中发生了任何化学变化或任何变性。
虽然已结合上述具体实施方案叙述了本发明，但许多变换、修改和变动对本领域普通技术人员来说都将是显而易见的。所有这些变换、修改和变动都将落在本发明的要旨和范围内。
权利要求
1.一种制备结晶干扰素α-2的方法，该方法包括使含有干扰素α-2的硫酸盐溶液与一种硫酸盐溶液平衡，使干扰素α-2溶液变得更浓，从而形成干扰素α-2结晶。
2.权利要求1的方法，其特征在于，所述平衡借助超滤或透析或用蒸气扩散法来实现。
3.权利要求1或2的方法，其特征在于，所述平衡用蒸气扩散法利用悬滴或夹滴来实现。
4.权利要求1-3中任一项的方法，其特征在于，使干扰素α-2的硫酸盐溶液与浓度更高的硫酸盐溶液平衡。
5.权利要求1-4中任一项的方法，其特征在于，干扰素α-2为人的重组干扰素α-2b。
6.权利要求5的方法，其特征在于，硫酸盐选自铵盐、钙盐、镉盐、钾盐、锂盐、镁盐或钠盐。
7.权利要求5的方法，其特征在于，硫酸盐为硫酸铵。
8.权利要求5的方法，其特征在于，干扰素α-2的硫酸盐溶液含有缓冲剂。
9.权利要求8的方法，其特征在于，干扰素α-2溶液缓冲至pH为7.3-8.0。
10.权利要求9的方法，其特征在于，缓冲剂为磷酸钠。
11.权利要求10的方法，其特征在于，形成干扰素α-2结晶时，干扰素α-2溶液中硫酸盐的浓度为约12%-30%饱和。
12.权利要求10的方法，其特征在于，形成干扰素α-2结晶时，干扰素α-2溶液中硫酸盐的浓度为约15%-25%饱和。
13.使干扰素α-2结晶的方法，其特征在于，用权利要求1的方法得到的晶体作晶种。
14.一种贮库制剂，它包含干扰素α-2晶体与一种药用贮库剂载体配伍。
15.根据权利要求14的制剂，其特征在于，干扰素α-2晶体为金属或鱼精蛋白配合物的形式。
16.根据权利要求15的制剂，其特征在于，金属配合物为锌配合物。
全文摘要
公开了一种制备干扰素α-2晶体的方法及其在贮库制剂中的应用。
文档编号C07K1/14GK1058022SQ9110368
公开日1992年1月22日 申请日期1991年6月4日 优先权日1990年6月4日
发明者保罗·赖歇特, 杰拉尔德·S·哈蒙德, 洪·V·李, 塔坦纳哈里·L·纳加布胡山, 保罗·P·特罗塔 申请人:先灵公司
再多了解一些
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