一种哈茨木霉ZL-811、菌剂、其制备方法与应用

一种哈茨木霉zl-811、菌剂、其制备方法与应用
技术领域
1.本发明属于土壤改良和修复菌技术领域，涉及一种哈茨木霉zl-811、菌剂、其制备方法与应用。


背景技术：

2.这里的陈述仅提供与本发明相关的背景技术，而不必然地构成现有技术。
3.盐碱地作为一种重要的土地资源，无论是自然形成还是人工滩涂围垦产生的滨海盐碱地和内陆盐碱地均是我国重要的后备土地资源，如国家级农高区黄河三角洲高效生态区的盐碱地分布广泛。此外，黄河三角洲蕴藏着丰富的油气资源，在石油开采、试油、洗井、油井大修、堵水、松泵、下泵等井下作业和油气集输过程中，均有原油洒落于地面，造成石油污染。石油污染将破坏土壤的结构，改变营养成份的可利用性，影响生物的生长繁殖，降低整个湿地生态系统的质量，对生物多样性造成严重破坏，严重威胁着黄河三角洲生态系统的安全。
4.目前，盐碱土壤的改良技术已由以水利工程为依托的物理化学手段向生物修复转变，但以植物为主体的生物修复技术受到耐盐植物种类、植物生长周期等因素的限制。近年来，微生物修复在盐碱地修复中逐渐得到重视，微生物菌剂可以改善植物根际环境，减轻盐分对作物生长的抑制作用，达到改良盐碱土壤的目的。但是，现有的微生物的耐盐活性和石油烃降解能力难以满足要求，对于石油污染的盐碱地的修复效果不佳。


技术实现要素：

5.针对现有技术存在的不足，本发明的目的是提供一种哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811、菌剂、其制备方法与应用。该菌株分离于黄河三角洲区域的石油污染盐碱土壤，具有菌落生长速度快、产厚垣孢子量大、对盐碱环境适应性强、能够降解石油污染物等特点，可显著促促进植物的耐盐性，而且其菌剂具有盐碱土壤改良和石油污染土壤修复功能。
6.为了实现上述目的，本发明是通过如下的技术方案来实现：
7.第一方面，本发明提供一种哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811，该菌株于保藏于2021年9月18日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏编号为cgmcc no.23238，保藏地址为中国科学院微生物研究所。
8.第二方面，本发明提供一种微生物菌剂，包括所述哈茨木霉zl-811孢子和载体，哈茨木霉zl-811孢子负载于载体上。
9.第三方面，本发明提供所述微生物菌剂的制备方法，包括如下步骤：将哈茨木霉zl-811孢子液与载体混合均匀，干燥粉碎，即得菌剂。
10.第四方面，本发明提供所述哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811或所述微生物菌剂在盐碱土壤修复或/和石油污染土壤修复中的应用；
11.或，所述哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811或所述微生物菌剂在盐胁迫
条件下促进植物种子萌发或促进植物幼苗生长中的应用；
12.或，所述哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811或所述微生物菌剂在田间病害防治中的应用。
13.上述本发明的一种或多种实施例取得的有益效果如下：
14.(1)保藏编号为cgmcc no.23238的哈茨木霉zl-811菌株，菌落生长速度快、对盐碱环境适应性强，可以显著促进植物种子和幼苗在盐碱土壤的萌发和生长，促进植物的耐盐性，可用于改善土壤盐碱性。
15.(2)哈茨木霉zl-811菌株能够高效降解石油烃污染物，14d的总石油烃降解率达到61.27％，可用于石油污染物的治理。
16.(3)哈茨木霉zl-811菌株具有良好的产厚垣孢子能力，200ml摇瓶培养10d后厚垣孢子产量达到1-2
×
108cfu/ml，这有助于木霉菌剂的制备和保存；
17.(4)哈茨木霉zl-811菌株具有良好的生物防治能力，在田间病害防治中喷施zl-811孢子液后，显著降低了小麦白粉病、烟草黑胫病和番茄枯萎病的发病率，减轻了病害。
18.(5)哈茨木霉zl-811菌株的厚垣孢子与合适的培养基载体混合可以制成高效的木霉多功能菌剂，该菌剂可以显著增加植物的产量，还可以用于石油污染盐碱土壤的高效生态修复。
附图说明
19.构成本发明的一部分的说明书附图用来提供对本发明的进一步理解，本发明的示意性实施例及其说明用于解释本发明，并不构成对本发明的不当限定。
20.图1为实施例1中哈茨木霉zl-811的全基因组测序结果示意图；
21.图2为实施例1中pda培养哈茨木霉zl-811的照片(a)和分生孢子显微照片(b和c)；
22.图3为实施例2中哈茨木霉zl-811在不同诱导剂的诱导下产厚垣孢子特性的测试图，其中，a为诱导剂为小麦秸秆，b为诱导剂为蘑菇渣，c为诱导剂为薄荷渣，d为在不同诱导剂下得到的发酵液中厚垣孢子浓度对比图；
23.图4为实施例3中哈茨木霉zl-811耐盐性的测试图；
24.图5为实施例3中哈茨木霉zl-811耐热性的测试图，其中，a为哈茨木霉zl-811在不同培养温度下的生长情况对比图，b为由高温转向低温培养后，哈茨木霉zl-811的生长情况对比图；
25.图6为实施例4中哈茨木霉zl-811对石油烃污染物的降解率对比图，其中，a为哈茨木霉zl-811与对照组对总石油烃的7d降解率对比图，b为哈茨木霉zl-811原油中正构烷烃(n-alkane)、异构烷烃(isoparaffin)和芳烃(aromatic hydrocarbon)的降解率对比图；
26.图7为实施例7中哈茨木霉zl-811菌剂存放不同时间的孢子活性对比图。
具体实施方式
27.应该指出，以下详细说明都是例示性的，旨在对本发明提供进一步的说明。除非另有指明，本发明使用的所有技术和科学术语具有与本发明所属技术领域的普通技术人员通常理解的相同含义。
28.第一方面，本发明提供一种哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811，该菌株于
保藏于2021年9月18日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏编号为cgmcc no.23238。
29.木霉菌株zl-811具有哈茨木霉(trichoderma harzianum)所有鉴定特征。表现为：在pda培养基上于28℃培养，培养4d时观察，分生孢子梗具有长主轴，侧枝常对生，瓶梗螺旋状排列；培养7d时观察，菌落正面孢子黄绿色菌丝白色，菌落反面橙黄色，基质中有橙黄色水溶性色素分布；菌落表面呈丝绒状，产生两圈黄绿色同心轮纹，菌丝紧密，无渗出液，产生大量的气生菌丝，无产孢簇；无明显气味，无自溶现象；培养14d时观察，分生孢子为近球形或卵形，呈黄绿色，表面光滑；培养18d时观察，具有间生或顶生的厚垣孢子，间生者常为椭形，顶生的常为球形。
30.哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811具有良好的产厚垣孢子的特性。表现为：在含诱导剂的产孢培养基中，培养在40h左右开始有厚垣孢子形成，随后产孢量逐渐增加，在培养70h后就可产生大量厚垣孢子，在培养10d后厚垣孢子产量达到1-2
×
109cfu/ml。
31.哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811具有较强的耐盐性，3％nacl处理下zl-811能够保持正常生长，而在5％nacl处理下zl-811能够保持接近50％的生长速率。
32.哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811具有良好的耐热性，在40℃下还能够正常生长；在42℃和45℃下虽不能生长，但是在处理3天后，哈茨木霉zl-811仍能保持活力，在转移到最适的28℃条件下可以正常生长。
33.此外，哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811在盐胁迫条件下可以促进植物种子萌发、促进植物幼苗生长。如，针对小麦(济麦22)和黄瓜(津研四号)，在nacl胁迫下，哈茨木霉zl-811提高2％的种子萌发率，并显著促进幼苗的生长，增加幼苗生物量。
34.同时，哈茨木霉zl-811表现出优异的石油烃降解性能，经过7d降解实验结果显示zl-811可有效降解总石油烃中各组分的含量。
35.哈茨木霉zl-811的孢子液还可以对小麦白粉病、烟草黑胫病、番茄枯萎病等田间病害具有较好的防治效果。哈茨木霉zl-811孢子液喷施后，显著降低了小麦白粉病、烟草黑胫病和番茄枯萎病的发病率，减轻了病害。
36.第二方面，本发明提供一种微生物菌剂，包括所述哈茨木霉zl-811孢子和载体，哈茨木霉zl-811孢子负载于载体上。
37.在一些实施例中，所述微生物菌剂中，孢子负载量为2
×
10
6-2
×
108cfu
·
g-1
。
38.优选的，所述载体为硅藻土、草炭和麸皮的混合物。
39.优选的，硅藻土、草炭和麸皮的质量比为3-5:1.5-2.5:1，优选为4:2:1。
40.施加该菌剂可有效改良土壤盐渍化程度，提高土壤有机质含量，增加土壤中的微生物群落数量和多样性，增加细菌和真菌的总量；同时，施加该菌剂有效降低了石油污染盐碱土壤中的石油烃含量。
41.第三方面，本发明提供所述微生物菌剂的制备方法，包括如下步骤：将哈茨木霉zl-811孢子液与载体混合均匀，干燥粉碎过筛，即得菌剂。
42.在一些实施例中，所述干燥的温度为35-40℃。
43.在一些实施例中，粉碎后过200目筛。
44.第四方面，本发明提供所述哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811或所述微生物菌剂在盐碱土壤修复或/和石油污染土壤修复中的应用；
45.或，所述哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811或所述微生物菌剂在盐胁迫条件下促进植物种子萌发或促进植物幼苗生长中的应用；
46.或，所述哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811或所述微生物菌剂在田间病害防治中的应用。
47.下面结合实施例对本发明作进一步说明。
48.实施例1
49.木霉菌株zl-811的分离及鉴定：
50.(1)菌种分离：
51.木霉菌株zl-811是利用耐盐木霉选择性培养基，培养基组成为：pda、0.4mol/l nacl、300mg/l氯霉素、100mg/l链霉素、20mg/l玫瑰红和0.05％triton x-100。
52.从东营黄河三角洲地区的采集石油污染盐碱土壤(土样采集地点特征：土壤盐度约为3.6％，土壤中石油污染的质量分数为1032mg kg-1
。土层植被较少仅有柽柳、碱蓬等零星分布)，称取10g土样，碾碎呈细微粉末状，置于含有90ml 0.9％nacl盐水的灭菌三角瓶中，28℃，160r/min，震荡1h充分混匀，制成土壤悬浊液；依次进行梯度稀释，并分别取1ml加入90mm的培养皿中，每个培养皿中倒入选择性培养基20ml，旋转混匀使培养皿中样品均匀分散在培养基中，置于28℃培养箱中培养3-4天；筛选疑似木霉的菌株，挑选单菌落转接到pda平板上培养长出菌落，采用单孢分离法进行分离纯化，保存备用。pda培养基配方为：马铃薯浸粉6g/l，葡萄糖20g/l，琼脂20g/l，ph值5.6
±
0.2。
53.(2)菌株鉴定：
54.利用fungi dna mini kit(omega，usa)提取木霉的基因组dna，用引物its1-f/its4进行扩增，pcr产物交上海生工生物股份有限公司进行测序，结果在ncbi和isth进行比对，发现菌株zl-811为哈茨木霉(trichoderma harzianum)，命名为哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811，将其保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏编号为cgmcc no.23238。
55.同时对哈茨木霉(trichoderma harzianum)zl-811开展了全基因组测序工作，其全基因组序列已提交ncbi ddbj/ena/genbank(accession no.jajolq00000000(version jajolq01000000)；bioproject:prjna785358；biosample:samn23554013)，基因组图谱示意图如图1所示。
56.(3)菌株培养并观察：
57.菌株在pda培养基上进行12h/12h光暗培养(图2)。该菌株在pda培养基上生长迅速：培养4d时，分生孢子梗具有长主轴，侧枝常对生，瓶梗螺旋状排列；培养7d时，菌落正面孢子黄绿色菌丝白色，菌落反面橙黄色，基质中有橙黄色水溶性色素分布，菌落表面呈丝绒状，产生两圈黄绿色同心轮纹，菌丝紧密，无渗出液，产生大量的气生菌丝，无产孢簇；培养14d时，分生孢子为近球形或卵形，呈黄绿色，表面光滑；培养18d时，具有间生或顶生的厚垣孢子，间生者常为椭形，顶生的常为球形。
58.实施例2
59.哈茨木霉zl-811发酵产厚垣孢子方法：
60.以mm培养基(15g/l kh2po4,5g/l(nh4)2so4,0.6g/l mgso4,0.6g/l cacl2,0.005g/l feso4·
7h2o,0.0016g/l mnso4·
h2o,0.0014g/l znso4·
7h2o,0.0037g/l cocl2·
6h2o,
20g/l葡萄糖，1％诱导剂，自然ph值)为基础培养基，分别添加质量分数为3％的产厚垣孢子诱导剂a(小麦秸秆)、b(蘑菇渣)、c(薄荷渣)，以不添加诱导剂作为对照。接种5ml活化的哈茨木霉zl-811发酵液到200ml培养基中，在28℃、180rpm的恒温振荡箱培养10d。显微镜观察厚垣孢子生长情况，使用活菌计数法计算哈茨木霉zl-811的厚垣孢子产量。
61.结果显示：在发酵10d后，在含有不同诱导剂(a：小麦秸秆、b：蘑菇渣、c：薄荷渣)的200ml发酵液中均可产生厚垣孢子(图3)，含量分别达到了1.4
×
108(a：小麦秸秆)、0.9
×
108(b：蘑菇渣)、0.8
×
108(c：薄荷渣)。
62.实施例3
63.哈茨木霉zl-811耐盐性和耐热性的鉴定：
64.(1)无菌孢子的收集
65.接种哈茨木霉zl-811于pda平板，28℃培养10天后，产生大量新鲜分生孢子；用10ml生理盐水(0.9％nacl，0.05％tween)洗涤菌丝表面，经玻璃绒纸过滤，去除菌丝体得到孢子悬液；用30％的甘油悬浮，充分混匀，分装到1.5ml离心管中，标记好名称和时间，-80℃冻存；取一管孢子液进行活菌计数，确定孢子液的浓度。
66.(2)耐盐实验
67.在pda平板上活化哈茨木霉zl-811，28℃避光培养48-72h，使得原始菌株和突变工程菌株长势均一，再使用打孔器制备大小均一的菌块并转移到含有不同浓度nacl的pda平板中央。将接有菌块的平板置于28℃培养，观察菌落生长情况。
68.结果发现，哈茨木霉zl-811有较强的耐盐性，在3％nacl处理下zl-811能够保持正常生长，而在5％nacl处理下zl-811也能保持接近50％的生长速率(图4)。
69.(4)耐热实验
70.在pda平板上活化哈茨木霉zl-811，28℃避光培养48-72h，使得原始菌株和突变工程菌株长势均一，再使用打孔器制备大小均一的菌块并转移到含有不同浓度nacl的pda平板中央。将接有菌块的平板置于28℃-45℃培养，观察菌落生长情况。另外，将接有菌块的平板置于42℃和45℃培养3d后，将平板转入28℃培养，观察菌落生长情况。
71.结果发现：哈茨木霉zl-811具有很强的耐热性，在40℃下还能够正常生长。在42℃和45℃下虽不能生长，但是在处理3天后，哈茨木霉zl-811仍能保持活力，在转移到最适的28℃条件下可以正常生长，如图5所示。
72.实施例4
73.哈茨木霉zl-811对石油烃污染物的降解试验：
74.将200μl哈茨木霉zl-811的孢子接种于pdb液体培养基中，28℃，180rpm培养48h后，将该菌液接种至原油质量浓度为0.5％的mm培养基(15g/l kh2po4,5g/l(nh4)2so4,0.6g/l mgso4,0.6g/l cacl2,0.005g/l feso4·
7h2o,0.0016g/l mnso4·
h2o,0.0014g/l znso4·
7h2o,0.0037g/l cocl2·
6h2o,20g/l葡萄糖，1％诱导剂，自然ph值)中，28℃，180rpm振荡培养7d，以不接种菌液的含0.5％原油的mm培养基为对照。
75.(1)原油降解率测定
76.采用重量法测定原油降解率。用四氯化碳萃取7d后培养液及瓶壁上的残油，液液分离后将有机相放在通风橱中，自然干燥，待四氯化碳挥发完全后，对残油进行称重，计算原油降解率。
77.(2)石油烃组分的测定
78.将萃取和脱水后的石油溶液旋蒸浓缩至约1ml，转移至硅酸镁填料柱净化，12ml正己烷淋洗净化柱，收集淋洗液，再次旋蒸浓缩并定容至1.0ml。gc-ms(agilent 7890a，美国)分析萃取液中的石油烃组分。按生态环境部标准《土壤和沉积物石油烃(c10-c40)的测定气相色谱法》(hj 1021—2019)中的方法进行结果分析和计算。
79.(3)结果分析：与对照组相比，7d后哈茨木霉zl-811对总石油烃的降解率为69.33％，如图6中图a。原油不同组分降解特性实验显示，菌株zl-811对原油中正构烷烃(n-alkane)、异构烷烃(isoparaffin)和芳烃(aromatic hydrocarbon)的降解率，其降解率分别为83.65％、75.11％和51.68％，降解效果显著，如图6中图b。
80.实施例5
81.盐胁迫下哈茨木霉zl-811孢子液对植物的促生试验：
82.供试材料：哈茨木霉zl-811孢子液，小麦(济麦22)和黄瓜(津研四号)
83.发芽试验在实验室里进行。挑选健康饱满的种子先用75％酒精消毒30s，再用2％的naclo表面消毒3min，无菌水冲洗4-5次，于超净工作台中风干至种子表面无水。选用直径为13cm的培养皿，3层灭菌滤纸，每皿20粒种子，10ml相应发芽溶液。在2％nacl处理下，以无菌水为发芽溶液的为对照组，以加入木霉孢子液(终浓度为105cfu/ml)为处理组，每个处理设置5个重复。统计种子的发芽，并对胚根长进行测定。
84.结果显示：在2％nacl处理下哈茨木霉zl-811对种子萌发的影响如表1(小麦)和表2(黄瓜)。哈茨木霉zl-811处理后，小麦和黄瓜种子的发芽率以及胚根生长指标在盐胁迫下均显著提高，表明哈茨木霉zl-811可以显著提高盐胁迫下种子萌发率，促进种子胚的生长。
85.表1盐胁迫下哈茨木霉zl-811对小麦种子萌发的影响
[0086][0087]
表2盐胁迫下哈茨木霉zl-811对黄瓜种子萌发的影响
[0088][0089]
幼苗生长效果试验在实验室里进行。挑选饱满一致的种子进行消毒处理，于25℃培养箱中遮光催芽至露白，然后进行16h光照/8h黑暗，培育一定时间后，挑选长势一致的幼苗移至水培装置，进行处理。以含2％nacl的1/2hoagland营养液为对照组，以加入木霉孢子液(终浓度为105)为处理组，每个处理设置5个重复，处理7d后进行株高和鲜重的测定。
[0090]
结果显示：在2％nacl处理下哈茨木霉zl-811对幼苗生长的影响如表3(小麦)和表4(黄瓜)。哈茨木霉zl-811处理后，小麦和黄瓜在盐胁迫下的幼苗生长，表明哈茨木霉zl-811可以显著促进盐胁迫下幼苗的生长，增加幼苗生物量。
[0091]
表3盐胁迫下哈茨木霉zl-811对小麦幼苗生长的影响
[0092][0093]
表4盐胁迫下哈茨木霉zl-811对黄瓜幼苗生长的影响
[0094][0095]
实施例6
[0096]
哈茨木霉zl-811菌剂对植物病害的防治试验：
[0097]
试验设2个处理，包括清水对照、哈茨木霉zl-811孢子液处理。
[0098]
烟草黑胫病田间抑制实验：各药剂均施用3次，第1次于移栽时施用，第2次于移栽后10d施用，第3次于移栽后20d施用。对植株全株进行喷雾，重点喷淋茎基部，使药液沿茎基部流渗到根际周围的表土里。移栽30d后观察是否出现药害，进行防效调查，每小区5点取样，每点选取30株。
[0099]
小麦白粉病田间抑制实验：白粉病初发期采用手动喷雾器喷药。药后30d进行防效调查，每小区5点取样，每点选取30株。
[0100]
番茄枯萎病田间抑制实验：选择番茄枯萎病发生严重且连作3年以上的田块。每个处理3次重复。在番茄6-7片真叶时进行移栽，移栽时采用孢子悬浮液灌根法接种番茄枯萎病病菌。移栽10d后进行第一次灌根处理，每棵苗300ml，间隔15d再灌根1次，共防治2次。30d后调查番茄植株枯萎病发病情况，计算防效。
[0101]
防治效果(％)＝(对照病叶平均严重度－处理病叶平均严重度)/对照病叶平均严重度
×
100。
[0102]
结果发现：经哈茨木霉zl-811孢子液喷施后，小麦白粉病、烟草黑胫病和番茄枯萎病的发病率显著降低，具有良好的防治效果(表5)。
[0103]
表5哈茨木霉zl-811孢子液喷洒对小麦白粉病、烟草黑胫病和番茄枯萎病的田间防治效果
[0104][0105]
实施例7
[0106]
哈茨木霉zl-811菌剂的制备及活性检测：
[0107]
木霉多功能微生物菌剂，为哈茨木霉菌株zl-811厚垣孢子液和菌剂载体混合而成，包含哈茨木霉菌株zl-811的厚垣孢子含量为2
×
(10
6-108)cfu
·
g-1
，菌剂载体成分为硅
藻土、草炭和麸皮。
[0108]
孢子的培养和收集：配制产厚垣孢子培养基(15g/l kh2po4,5g/l(nh4)2so4,0.6g/l mgso4,0.6g/l cacl2,0.005g/l feso4·
7h2o,0.0016g/l mnso4·
h2o,0.0014g/l znso4·
7h2o,0.0037g/l cocl2·
6h2o,20g/l葡萄糖，1％小麦秸秆，自然ph值)，接种5ml活化的哈茨木霉zl-811发酵液到200ml培养基中，28℃、180rpm的恒温振荡箱培养10d后，无菌离心，浓缩收集孢子液，使用活菌计数法计算哈茨木霉zl-811的厚垣孢子产量。
[0109]
菌剂载体的制备：分别称量硅藻土3000g、草炭1500g和麸皮750g，气流粉碎并过300目筛，收集得培养基载体。
[0110]
复合菌剂的制备：取哈茨木霉zl-811厚垣孢子液(109cfu
·
ml-1
)，与200g菌剂载体搅拌混匀并置于35℃下保温烘干，随后粉碎过200目筛，收集得哈茨木霉zl-811菌剂。
[0111]
复合菌剂中有效活性孢子的检测：取1g哈茨木霉zl-811菌剂，取含9ml去离子水的长试管，制备孢子悬液，分别设置7个稀释浓度(10-1-10-7
)，然后各取100μl加入到平板培养皿中，向加入菌液的平板中倒入含triton x-100的pda培养基，充分摇匀。待冷却凝固后，培养皿倒置放入培养箱中，28℃培养3天后进行菌落计数，完成活菌计数。
[0112]
结果显示：制备的哈茨木霉zl-811菌剂含有活性厚垣孢子孢子含量为1.8
×
108cfu/g。在常温存放6个月和12个月后，活性厚垣孢子含量为1.6
×
108cfu/g和1.3
×
108cfu/g，保持了较高的厚垣孢子活力，如图7所示。
[0113]
实施例8
[0114]
哈茨木霉zl-811菌剂对石油污染盐碱土壤的改良试验：
[0115]
石油污染盐碱土壤的采集地点在胜利油田孤东采油区某采油井附近。实验前先测定盐碱土壤性状指标和石油烃含量。取土壤样品10kg，按1％的施加量将制备得到的哈茨木霉zl-811菌剂加入石油污染盐碱土壤中，混合均匀。处理20d后，取土壤样品再次测定土壤性状指标和石油烃含量。
[0116]
表6哈茨木霉zl-811菌剂对盐碱土壤的改良效果
[0117][0118][0119]
表7哈茨木霉zl-811菌剂对石油污染土壤中石油烃的降解效果
[0120][0121]
结果显示：哈茨木霉zl-811菌剂处理20d后，石油污染盐碱土壤的含盐量显著下降，而土壤的有机质含量、紧实度、水稳性团聚体、含水量以及菌落数量显著上升(表6)。同时，石油污染土壤中的正构烷烃含量、异构烷烃含量和芳烃含量均显著下降(表7)。
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