一种高产法尼醇基因工程菌及其构建方法与应用与流程

1.本发明涉及微生物发酵技术领域，尤其涉及一种高产法尼醇基因工程菌及其构建方法与应用。


背景技术：

2.法尼醇(farnesol)分子式：c
15h26
o，又名法呢醇，合金欢醇，里哪醇，菌绿烯醇，麝子油醇，是一种具有芳香气味的非环状倍半帖醇。广泛分布于许多植物精油中，也存在于动物和微生物中,在信号转导、群体感应和细胞凋亡诱导等过程中发挥重要作用,可以作为杀菌清洁剂、杀虫剂、昆虫引诱剂。它是重要化工生产原料，被广泛应用于化妆品和医学药物的工业化生产，也可作为航空燃料的理想替代品。
3.法尼醇可以从植物中分离提取，但提取步骤繁琐，且质量与原料息息相关，而经化学方法合成的法尼醇，往往存在异构体混杂、毒性大等问题。除此之外，微生物发酵也是法尼醇的一个来源，微生物发酵法具有条件温和，不受地理和气候影响和容易进行大规模生产等优势，但目前能用于发酵生产法尼醇的菌株的产量都普遍偏低，且菌株稳定性很差，很难用于工业化生产。因此，构建高产稳定的法尼醇生产菌株，对其生产和应用具有重要意义。
4.酿酒酵母细胞能够合成内源性法尼醇，但其产量很低，无法满足工业生产的需要。


技术实现要素：

5.本发明的目的在于，针对现有技术的上述不足，提出一种高产法尼醇基因工程菌及其构建方法与应用。
6.为实现上述目的，本发明采用如下的技术方案：
7.本发明提供的一种高产法尼醇基因工程菌的构建方法，包括以下步骤：
8.步骤s1，构建酿酒酵母mva途径相关基因表达模块：过表达thmg1模块，包括诱导型双向强启动子pgal1-10和mva途径限速酶编码基因thmg1，所述pgal1-10的核苷酸序列如seqno.1所示，所述thmg1的核苷酸序列如seqno.2所示；
9.步骤s2，构建法尼醇生产相关基因表达模块：erg20-linker-pah1模块，包括fpp合酶的编码基因erg20和酿酒酵母内源性磷酸酶的编码基因pah1，所述erg20的核苷酸序列如seqno.3所示，所述pah1的核苷酸序列如seqno.4所示；
10.步骤s3，构建敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达的工程菌：将步骤s1所述酿酒酵母mva途径相关基因表达模块和步骤s2所述法尼醇生产相关基因表达模块整合至半乳糖调节蛋白gal80基因位点，同时敲除半乳糖调节蛋白gal80基因，得到敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达模块，将所述敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达模块转化至构建的酿酒酵母基因工程菌gs-a3中，经多次基因工程操作，获得敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达的基因工程菌；
11.步骤s4，构建角鲨烯合酶途径下调表达质粒，包括将铜离子诱导启动子pcup1替
换为角鲨烯合酶基因erg9启动子，所述pcup1的核苷酸序列如seqno.5所示；所述角鲨烯合酶基因erg9启动子取至erg9基因起始密码子前450bp，其核苷酸序列如seqno.6所示；
12.步骤s5，将步骤s5所述角鲨烯合酶途径下调表达质粒转化至步骤s3所述的敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达的基因工程菌中，依次经抗生素抗性筛选，然后通过菌落pcr验证，获得高产法尼醇基因工程菌。
13.进一步的，在步骤s1中，所述过表达thmg1模块的构建方法包括以下步骤：
14.步骤s1，以酿酒酵母3000b基因组dna为模板，分别用tcyc1-f和tcyc1-r、thmg1-f和thmg1-r、pgal1pgal10-f和pgal1pgal10-r引物进行pcr反应，获得dna片段tcyc1、thmg1和pgal10pgal1；
15.步骤s2，将步骤s1获得的三个dna片段tcyc1、thmg1和pgal10pgal1，通过用引物tcyc1-f和pgal1pgal10-r进行重叠延伸pcr反应，连接在一起，获得过表达thmg1模块，即tcyc1_thmg1_pgal10pgal1模块。
16.进一步的，步骤s2中，所述erg20-linker-pah1模块的构建方法包括以下步骤：
17.步骤s1，以酿酒酵母3000b基因组dna为模板，分别用erg20-f和erg20-linker-r引物进行pcr反应，扩增得到dna片段erg20_linker；
18.步骤s2，用引物linker-pah1-f和pah1-r进行pcr反应，扩增得到dna片段linker_pah1；
19.步骤s3，用引物terg20-f和terg20-r进行pcr反应，扩增得到dna片段terg20；
20.步骤s4，将步骤s1获得的dna片段erg20_linker、步骤s2获得的dna片段linker_pah1和步骤s3获得的dna片段terg20，通过用引物erg20-f和terg20-r进行重叠延伸pcr反应，连接在一起，获得融合表达erg20-linker-pah1模块，即erg20_linker_pah1_terg20。
21.进一步的，所述linker包括甘氨酸和丝氨酸，其组合结构包括gsg、gggs和gsggsg中的任一种，其中g对应核酸序列ggt，s对应核酸序列tct。
22.进一步的，在步骤s2中，所述erg20-linker-pah1模块中的linker为gsg。
23.进一步的，在步骤s3中，所述构建敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达模块的构建方法包括以下步骤：
24.步骤s1，以酿酒酵母3000b基因组dna为模板，分别用gal80left-f和gal80left-r、gal80right-f和gal80right-r引物进行pcr反应，扩增得到dna片段gal80的左右同源臂gal80left和gal80right；
25.步骤s2，以质粒载体pfz201为模板，用引物hyg-f和hyg-r进行pcr反应，获得潮霉素表达盒hyg；
26.步骤s3，将所述过表达thmg1模块和所述erg20-linker-pah1模块、gal80left，gal80right和hyg五个dna片段，通过用引物gal80left-f和gal80right-r进行重叠延伸pcr反应，连接在一起，获得dna片段为敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达模块的；
27.步骤s4，将步骤s3获得的dna片段与质粒pmd19-t连接，获得重组质粒载体，用限制性内切酶pmei线性化所述重组质粒，回收带有目的基因的片段，将片段用酵母醋酸锂转化法转化至宿主菌酿酒酵母中，依次经抗生素抗性筛选，然后通过菌落pcr获取阳性菌落，获得敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达的工程菌。
28.进一步的，在步骤s3中，所述宿主菌酿酒酵母包括酿酒酵母30000b、酿酒酵母
s.cerevisiae cen.pk2-1d、酿酒酵母by4741和酿酒酵母gs-a3中的任一种，所述酿酒酵母gs-a3于2021年9月17日保藏于中国典型培养物保藏中心，保藏编号为：cctcc no:m20211191。
29.进一步的，在步骤s4中，所述角鲨烯合酶途径下调表达质粒的构建方法包括以下步骤：
30.步骤s4，将步骤s3获得的dna片段g418_pcup1/δpegr9与质粒
31.pmd19-t连接，获得角鲨烯合酶途径下调表达质粒载体，记为pcz101。
32.本发明还提供了一种高产法尼醇基因工程菌，采用上述构建方法得到的。
33.本发明还提供了利用上述高产法尼醇基因工程菌的生产法尼醇，所述高产法尼醇基因工程菌的液体发酵培养基组分包括葡萄糖20-50g/l，酵母提取物5-10g/l，硫酸铵6-15g/l，磷酸二氢钾3-8g/l，七水硫酸镁5-10g/l，硫胺素 100-500mg/l，吡哆素100-500mg/l，肌醇400-800mg/l，生物素20-100mg/l和泛酸钙100-500mg/l。
34.本发明提供的技术方案带来的有益效果是：
35.(1)本发明的构建方法是利用同源重组的方式将双向强启动子pgal1-10 驱动的酿酒酵母菌来源的甲羟戊酸途径限速酶编码基因thmg1和fpp合酶 (erg20)与酿酒酵母内源性磷酸酶(pah1)融合蛋白质的基因元件 (erg20-linker-pah1)整合入出发菌株酿酒酵母基因组，整合位点为半乳糖调节蛋白80基因(gal80)，整合目的基因的同时敲除半乳糖调节蛋白80基因，以增强甲羟戊酸代谢途径代谢强度，进一步增强法尼醇的表达。该构建方法具有简单快速高效的优点，2～3周即可获得大片段整合工程菌株，明显缩短工程菌构建周期。
36.(2)本发明以(1)中所获工程菌为基础，使用铜离子诱导启动子pcup1替换角鲨烯合酶编码基因erg9启动子下调其表达水平，可以减少fpp流向麦角固醇竞争途径，进一步提高法尼醇产量；最终获得高产法尼醇的基因工程菌株。按照本发明的方法获得的基因工程菌的法尼醇的摇瓶发酵产量可达到约 573mg/l，发酵罐产量可达到约21g/l，完全具备商业化生产水平，具有良好的工业应用前景。
37.(3)本发明可利用简单培养基发酵生产法尼醇，可实现多基因一次性高效转化与整合，可明显缩短工程菌构建时间，所得工程菌可利用葡萄糖、蔗糖等简单碳源进行法尼醇的发酵生产，有较好的应用前景。
附图说明
38.图1为本发明的酿酒酵母基因工程菌的生产法尼醇的生物代谢原理示意图；
39.图2为本发明实施例1构建的敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达模块的重组质粒pcz100的结构示意图；
40.图3为本发明实施例1构建的角鲨烯合酶途径下调表达的重组质粒pcz101 的结构示意图；
41.图4为不同linke连接对法尼醇产量的影响比较图；
42.图5为不同基因工程菌gs-a3-c4、g30000b-c2、cen.pk2-1d-c2和 by474-c2生产法尼醇的比较图。
具体实施方式
43.为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚，下面将结合附图和实施例对本发明实施方式作进一步地描述。
44.本发明在研究的过程中使用的材料和方法如下：
45.本发明中的全基因合成、引物合成及测序皆由武汉天一华煜基因科技有限公司完成，用到的高保真酶(primestar gxl dna polymerase)，普通taq 酶(premix taq)，pmd19-t vector等购买于武汉友名生物技术有限公司，限制性内切酶购买于湖北晶茂生物技术有限公司；酿酒酵母30000b为市售。
46.本发明中的分子生物学实验包括质粒构建、酶切、感受态细胞制备﹑转化等主要参照《分子克隆实验指南》(第三版)，j.萨姆布鲁克，d.w.拉塞尔(美)编著,黄培堂等译，科学出版社，2002)进行。
47.lb固体培养基：10g/l胰蛋白胨，5g/l酵母提取物，10g/l氯化钠，20g/l 琼脂粉；
48.ypd培养基：10g/l酵母提取物，20g/l胰蛋白胨，20g/l葡萄糖；发酵时添加10％的肉豆蔻酸异丙酯，防止产物挥发；
49.ypd固体培养基:10g/l酵母提取物，20g/l胰蛋白胨，20g/l葡萄糖，20g/l 琼脂粉。
50.下列实施例中还有未注明具体实验条件的试验方法，通常按照常规实验条件或按照制造厂所建议的实验条件。所使用的材料、试剂等，如无特殊说明,为从商业途径得到的试剂和材料。
51.如图1所示为生物合成法尼醇的代谢原理图，本发明构建的高产法尼醇基因工程菌，是利用同源重组的方式将双向强启动子pgal1-10驱动的酿酒酵母菌来源的甲羟戊酸途径限速酶编码基因thmg1；fpp合酶(erg20)与酿酒酵母内源性磷酸酶(pah1)融合蛋白质的基因元件(erg20-linker-pah1)整合入出发菌株酿酒酵母基因组，整合位点为半乳糖调节蛋白80基因(gal80)，整合目的基因的同时敲除半乳糖调节蛋白80基因；然后用铜离子诱导启动子 pcup1替换上述重组菌体内角鲨烯合酶基因erg9的启动子下调其表达水平。
52.其中，诱导型双向强启动子pgal1-10的核苷酸序列如seq no.1所示；甲羟戊酸途径限速酶为截短的3-羟基-3-甲基戊二酰辅酶a还原酶，编码基因 thmg1的核苷酸序列如seq no.2所示，fpp合酶(erg20)编码基因的苷酸序列如seq no.3所示，酿酒酵母内源性磷酸酶(pah1)编码基因的苷酸序列如seq no.4所示，将seq id no.3所示序列的3’端终止密码子tag去除,与 seq id no.4所示序列的5'端用编码linker的碱基序列连接；构建出 erg20-linker-pah1融合蛋白质的基因元件；erg20的催化产物fpp，是pah1 的底物，两个酶通过linker序列融合表达，在空间构象上拉近它们的距离，可以提高由ipp到fpp再到法尼醇的反应效率，避免fpp的浪费和减少fpp去往其他代谢支路，从而提高法尼醇的产量。
53.又因为角鲨烯合酶竞争底物的能力较强，大多数fpp都流向了麦角固醇，导致其他萜类物质产量较低。因此，要想实现目的产物的高效合成，阻断或下调麦角固醇竞争途径是十分必要的。但erg9是生长必须基因，不能敲除，必须动态调控。因此本发明用铜离子诱导启动子pcup1替换角鲨烯合酶基因erg9 的启动子下调其表达水平；铜离子诱导启动子pcup1的苷酸序列如seq no.5 所示；选用角鲨烯合酶基因erg9启动子取erg9基因起始密码子前450bp，其核苷酸序列如seq no.6所示。
54.为了更准确的指构建的各个模块的正确结合，构建过程中还使用了两个终止子
tcyc1和terg20，分别对应的核苷酸序列为seq no.7和seq no.8。
55.实施例1-3和对比例1-3中使用的引物序列信息如表1所示：
56.表1：引物序列
57.[0058][0059]
实施例1
[0060]
高产法尼醇基因工程菌gs-a3-c4的构建：
[0061]
步骤s1，过表达thmg1模块的构建
[0062]
tcyc1_thmg1_pgal10pgal1
[0063]
1)以酿酒酵母3000b基因组dna为模板，分别用tcyc1-f和tcyc1-r、 thmg1-f和thmg1-r、pgal1pgal10-f和pgal1pgal10-r引物进行pcr反应，获得dna片段tcyc1、thmg1和pgal10pgal1；
[0064]
2)将步骤s1获得的三个dna片段tcyc1、thmg1和pgal10pgal1，通过用引物tcyc1-f和pgal1pgal10-r进行重叠延伸pcr反应，连接在一起，获得过表达thmg1模块，即tcyc1_thmg1_pgal10pgal1模块。
[0065]
步骤s2，融合表达erg20-linker-pah1模块的构建
[0066]
erg20_linker_pah1_terg20
[0067]
1)以酿酒酵母3000b基因组dna为模板，分别用erg20-f和erg20-linker
ꢀ‑
r引物进行pcr反应，扩增得到dna片段erg20_linker。
[0068]
2)用引物linker-pah1-f和pah1-r进行pcr反应，扩增得到dna片段 linker_pah1。
[0069]
3)用引物terg20-f和terg20-r进行pcr反应，扩增得到dna片段 terg20。
[0070]
4)将上述获得的dna片段erg20_linker、步骤s2获得的dna片段 linker_pah1和步骤s3获得的dna片段terg20，通过用引物erg20-f和 terg20-r进行重叠延伸pcr反应，连接在一起，获得融合表达 erg20-linker-pah1模块，即erg20_linker_pah1_terg20。
[0071]
其中，linker包括linker1、linker2和linker3，分别对应的氨基酸序列为 gsg、gggs和gsggsg，g对应核酸序列ggt，s对应核酸序列tct。
[0072]
步骤s3，构建敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达的工程菌
[0073]
1)以酿酒酵母3000b基因组dna为模板，分别用gal80left-f和 gal80left-r、gal80right-f和gal80right-r引物进行pcr反应，扩增得到dna 片段gal80的左右同源臂
gal80left和gal80right。
[0074]
2)以质粒载体pfz201为模板，用引物hyg-f和hyg-r进行pcr反应，获得潮霉素表达盒hyg。
[0075]
3)将所述过表达thmg1模块和所述erg20-linker-pah1模块、gal80left， gal80right和hyg五个dna片段，通过用引物gal80left-f和gal80right-r 进行重叠延伸pcr反应，连接在一起，获得dna片段为敲除半乳糖调节蛋白 gal80基因表达模块的。
[0076]
选用linker1连接，可获得模块：
[0077]
gal80left_hyg_tcyc1_thmg1_pgal10pgal1_erg20_linker1_pah1_terg20_gal80right。
[0078]
4)将上述获得的模块连接pmd19-t载体，转入大肠内扩增，酶切和测序验证正确后，获得重组质粒载体pcz100：
[0079]
pcz100δgal80：：hyg_tcyc1_thmg1_pgal10pgal1_erg20_linker1_pah1_terg20；
[0080]
质粒载体pcz100的结构图如图2所示。
[0081]
5)将上述构建的重组质粒载体pcz100，用限制性内切酶pmei分别线性化，回收带有目的基因的片段，将片段用酵母醋酸锂转化法转化至酿酒酵母gs-a3，涂布到含500μg/ml潮霉素的ypd平板上，挑取转化子并提基因组pcr验证，获得对应正确的转化菌株gs-a3-c1。
[0082]
步骤s4，角鲨烯合酶途径下调表达质粒的构建
[0083]
pcz101δpegr9：：g418_pcup1
[0084]
1)以酿酒酵母3000b基因组dna为模板，分别用perg9-left-f和perg9-left-r、pcup1-f和pcup1-r、perg9-right-f和perg9-right-r引物进行pcr反应，扩增得到dna片段perg9-left、pcup1和perg9-righ。
[0085]
2)以质粒载体pfz202为模板，用引物g418-f和g418-r进行pcr反应，获得g418表达盒g418。
[0086]
3)将上述获得的dna片段perg9-left、pcup1和perg9-righ和步骤s1 获得的表达盒g418五个dna片段，通过用引物perg9-left-f和perg9-right-r 进行重叠延伸pcr反应，连接在一起，获得dna片段g418_pcup1/δpegr9。
[0087]
4)将上述获得的dna片段g418_pcup1/δpegr9与质粒pmd19-t连接，获得角鲨烯合酶途径下调表达质粒载体，记为pcz101，其结构图如图3所示。
[0088]
步骤s5，用限制性内切酶pmei线性化质粒pcz101，回收带有目的基因的片段，将片段用酵母醋酸锂转化法转化至上述酿酒酵母gs-a3-c1菌株中，涂布到含500μg/ml g418和200μmol/l铜离子的ypd平板上，挑取转化子并提基因组pcr验证，获得对应正确的高产法尼醇的转化菌株gs-a3-c4。
[0089]
实施例2
[0090]
基因工程菌gs-a3-c5的构建：
[0091]
构建方法同实施例1，其中步骤s3中选用的linker连接为linker2，构建的敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达dna片段为：
[0092]
gal80left_hyg_tcyc1_thmg1_pgal10pgal1_erg20_linker2_pah1_terg20_gal80right；
[0093]
构建的重组质粒载体pcz200为：
[0094]
pcz200δgal80：：hyg_tcyc1_thmg1_pgal10pgal1_erg20_linker2_pah1_terg20。
[0095]
构建的敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达的工程菌为gs-a3-c2。
[0096]
实施例3
[0097]
基因工程菌gs-a3-c6的构建：
[0098]
构建方法同实施例1，其中步骤s3中选用的linker连接为linker3，构建的敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达dna片段为：
[0099]
gal80left_hyg_tcyc1_thmg1_pgal10pgal1_erg20_linker3_pah1_terg20_gal80righ；
[0100]
构建的重组质粒载体pcz300为：
[0101]
pcz300δgal80：：hyg_tcyc1_thmg1_pgal10pgal1_erg20_linker3_pah1_terg20。
[0102]
构建的敲除半乳糖调节蛋白gal80基因表达的工程菌为gs-a3-c3。
[0103]
对比例1
[0104]
基因工程菌30000b-c2的构建
[0105]
构建方法同实施例1，将步骤s3获得的质粒载体pcz100和步骤s4获得质粒载体pcz101，用限制性内切酶pmei线性化，回收带有目的基因的片段，分两步将片段用酵母醋酸锂转化法转化至酿酒酵母底盘菌株30000b中，挑取转化子并提基因组pcr验证，获得对应正确的高产法尼醇的转化菌株30000b-c2。
[0106]
对比例2
[0107]
基因工程菌cen.pk2-1d-c2的构建
[0108]
构建方法同实施例1，将步骤s3获得的质粒载体pcz100和步骤s4获得质粒载体pcz101，用限制性内切酶pmei线性化，回收带有目的基因的片段，分两步将片段用酵母醋酸锂转化法转化至酿酒酵母底盘菌株s.cerevisiaecen.pk2-1d中，挑取转化子并提基因组pcr验证，获得对应正确的高产法尼醇的转化菌株cen.pk2-1d-c2。
[0109]
对比例3
[0110]
基因工程菌by474-c2的构建
[0111]
构建方法同实施例1，将步骤s3获得的质粒载体pcz100和步骤s4获得质粒载体pcz101，用限制性内切酶pmei线性化，回收带有目的基因的片段，分两步将片段用酵母醋酸锂转化法转化至酿酒酵母底盘菌株by474中，挑取转化子并提基因组pcr验证，获得对应正确的高产法尼醇的转化菌株by474-c2。
[0112]
为了说明本发明构建的高产法尼醇基因工程菌的高产法尼醇的机理和应用能力，通过对不同linker连接对法尼醇产量的影响，改造不同酿酒酵母底盘菌株的对法尼醇产量的影响进行了对比研究。
[0113]
测定发酵液中法尼醇浓度的方法：
[0114]
检测流程：
[0115]
将45ml发酵液置于50ml离心管中，于10000r/min离心10min，小心吸取上层肉豆蔻酸异丙酯液体，用色谱级正己烷稀释至合适浓度检测。
[0116]
仪器：使用安捷伦7890a气相色谱仪，色谱柱为agilenthp-5(30mx0.32mmx0.25μm)，柱箱温度：初始温度100℃，保留2min，以10℃/min升至280℃,保留3min，进样口温度280℃，进样量1μl，柱流量1ml/min，注入分流比1:50，检测器(fid)温度280℃，氮气作为载
气，入口压力是12-18psi，模式为恒流模式，标准品：法尼醇(sigma)。
[0117]
1.比较不同linke连接对法尼醇产量的影响
[0118]
分别取10μl保存在甘油管的菌株gs-a3-c1、菌株菌株gs-a3-c2和菌株gs-a3-c3到含有5mlypd(含铜离子终浓度为200μmol/l)培养基的pa瓶中，30℃摇床220rpm培养16h，获得一级种子；将一级种子以1％的转接量转到含有200ml ypd培养基的摇瓶中，30℃摇床220rpm培养五天，测定法尼醇的含量。
[0119]
如图4所示，结果显示菌株gs-a3-c1的产量高于gs-a3-c2和gs-a3-c3 为183.24
±
16.23mg/l。可见，llinker-gsg更有利于erg20和pah1融合表达，提高由ipp到fpp再到法尼醇的反应效率，从而提高法尼醇的产量。
[0120]
2.比较用启动子pcup1替换perg9对法尼醇产量的影响
[0121]
取10μl保存在甘油管的菌株gs-a3-c4到含有5mlypd(含铜离子终浓度为200μmol/l)培养基的pa瓶中，30℃摇床220rpm培养16h，获得一级种子；将一级种子以1％的转接量转到含有200ml ypd培养基的摇瓶中，30℃摇床220rpm培养五天，测定法尼醇的含量。
[0122]
结果显示，gs-a3-c4的产量相较于于gs-a3-c1的183.24
±
16.23mg/l提高到573.62
±
43.82mg/l。可见，用启动子pcup1替换perg9，有利于减少fpp 流向麦角固醇，更多流向法尼醇途径，进而提高法尼醇的产量。
[0123]
3.比较改造不同酿酒酵母底盘菌株的法尼醇产量
[0124]
分别取10μl保存在甘油管的菌株gs-a3-c4、菌株30000b-c2、菌株 cen.pk2-1d-c2和菌株by474-c2到含有5mlypd(含铜离子终浓度为 200μmol/l)培养基的pa瓶中，30℃摇床220rpm培养16h，获得一级种子；将一级种子以1％的转接量转到含有200ml ypd培养基的摇瓶中，30℃摇床 220rpm培养五天，测定法尼醇的含量。
[0125]
如图5所示，结果显示菌株gs-a3-c4的法尼醇产量明显高于菌株 g30000b-c2、菌株cen.pk2-1d-c2和菌株by474-c2。可见，gs-a3是本技术人筛选进化的一株高产角鲨烯菌株，能提供更充足的前体物质，从而提高法尼醇的产量。
[0126]
3.利用菌株gs-a3-c4发酵生产法尼醇
[0127]
取10μl保存在甘油管的菌株到含有5mlypd(含铜离子终浓度为 200μmol/l)培养基的pa瓶中，30℃摇床220rpm培养16h，获得一级种子；将一级种子以1％的转接量转到含有200ml ypd(含铜离子终浓度为200μmol/l)培养基的摇瓶中，30℃摇床220rpm培养12h，获得二级级种子；向5l生物发酵罐中加入2.5l发酵培养基,以10％的转接量接入活化的二级种子液。发酵过程中，温度控制在30℃，ph用浓氨水全程控制在5.0，发酵罐起始转速为200rpm，通气量为1l/min，溶氧100％，随着发酵的进行，od不断增大，溶氧会不断下降，待降到20％左右，就通过逐步提升转速和通气量控制溶氧在 20％左右，直到最大转速和通气；前期通过调整补料一把发酵罐中葡萄糖浓度控制在1g/l以下；发酵到30小时时，加入发酵体积15％肉豆蔻酸异丙酯作为有机相，并改用补料二，将发酵罐中乙醇浓度维持在1g/l以下，发酵5天。
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发酵培养基中包含如下组分：葡萄糖40g/l,酵母提取物5g/l，硫酸铵12g/l，磷酸二氢钾8g/l，七水硫酸镁6.2g/l，硫胺素200mg/l，吡哆素200mg/l，肌醇500mg/l，生物素50mg/l，泛酸钙200mg/l。
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补料一组分为：葡萄糖800g/l，酵母提取物50g/l。
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补料二组分为：蔗糖800g/l，酵母提取物50g/l。
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最终发酵罐生产的法尼醇产量高达到21g/l，完全具备工业化生产能力，本发明构建的高产法尼醇基因工程菌可应用于工业生产法尼醇。
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在不冲突的情况下，本文中上述实施例及实施例中的特征可以相互结合。
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以上所述仅为本发明的较佳实施例，并不用以限制本发明，凡在本发明的精神和原则之内，所作的任何修改、等同替换、改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。