鹿血肽酒的制备方法及鹿血肽酒与流程

1.本技术涉及保健酒技术领域，尤其涉及鹿血肽酒的制备方法及鹿血肽酒。


背景技术：

2.鹿血，为鹿科动物梅花鹿或者马鹿的血，是一味名贵的中药。其味甘咸,性热,归肝，肾二经。有养血益精、行血祛瘀、消肿疗伤等功效。在历代医书中均有详细记载，主治虚损腰痛,心悸,失眠,肺痨吐血，大补虚损。鹿血是中医临床上不可缺少的一味重要的药材,而对其深入的研究有着重要的发展前景。随着人们对保健品与药品的重视,使得鹿血的药用保健价值更吸引国内外的关注。现代研究中证实鹿血具有非常广泛的药理作用，鹿血成分较为复杂，但营养价值和药用价值极高。鹿血约含水量80％，有机物17％和灰分4％，主要成分为蛋白质、氨基酸、脂类、游离脂肪酸、固醇、磷脂、多糖、多种酶等。含有的y-球蛋白、胱氨酸和赖氨酸，可能会通过磷酸肌酸激酶影响心脏相关功能。鹿血中富含多种矿物质元素和人体必需微量元素，如fe、co、cr、cu、mn、mo、ni、zn等。鹿血除传统药用功效，还可以补气补血、提高免疫力、抗衰老和抗疲劳等。
3.抗衰老在现在医学认为,自由基的作用是哺乳动物衰老的主要原因，其中体内超氧化物歧化酶活性下降,单胺氧化酶活性增强,体内自由基积累,从而在体内氧化细胞膜的不饱和脂肪酸,形成脂质过氧化,促使细胞膜失去生理功能,组织及器官老化,代谢功能降低。有研究表明,鹿血清有降低大鼠血清lpo含量和提高sod活性的作用,同时也说明鹿血清不仅可以减轻组织或细胞的过氧化损伤,减少脂类过氧化物的形成,还能通过提高sod的活性，从而对机体起到保护和抗氧化的作用。
4.增强免疫调节能力，免疫力是人体自身的防御机制,是人体识别和消灭外来侵入的任何异物病毒、细菌等，并具有处理衰老、损伤、死亡的自身细胞以及识别和处理体内突变细胞和病毒感染细胞等能力。有研究表明，鹿血可以明显增强小鼠腹腔中细胞的吞噬作用,增强中处理和递呈抗原的作用,并增强和淋巴细胞的活性。明显提高小鼠脾细胞溶血空斑数目,增强细胞活性及促进小鼠脾细胞产生的能力。说明鹿血有增强和调节机体免疫功能的作用。
5.鹿血同时具有补气及补血的作用,表现为可治疗心悸,精神疲倦、面色萎黄、懒言音低、四肢无力等。有小鼠实验证明,鹿血对小鼠萎缩的胸腺、脾脏、肝脏均有促进恢复的作用,并使小鼠低温游泳时间明显延长,提高机体免疫功能和应激功能。说明鹿血中含有的丰富的氨基酸,及丰富的维生素和多种微量元素有较好的补气、补血的作用。可以用于病后体虚,气血两亏等。
6.抗疲劳，鹿血具有养血益精的功效,用于多种虚弱症。可以明显的提高机体免疫功能和应激能力。鹿血还可以改善睡眠和食欲,降低肌肉的疲劳,对疲劳、中医虚症及寒症等疾病有显著的疗效。有研究发现,梅花鹿血粉可明显延长缺氧小鼠的存活时间和小鼠低温游泳时间,说明鹿血对动物常压缺氧能力和运动能力有显著提高，具有明显的抗缺氧、抗疲劳作用。
7.目前,食用鹿血的方式主要有烧汤、红烧等,也可将鹿血风干,制成丸剂和散剂,但这些食用方式没有充分体现鹿血的药用值。进而为了增强药效,人们采用将鹿血与白酒混合制成药酒，利用白酒的行血、发散、容易吸收和助长药性的特点以及人们每天有饮适量白酒的生活习惯,达到饮食和保健的有机结合。但目前现有的鹿血酒，制备工艺落后，酒中有不溶性沉淀残渣，影响酒的观感和口感的同时，还存在药效不理想,品质不纯正等问题。


技术实现要素：

8.本技术实施例的目的在于提出一种鹿血肽酒的制备方法及鹿血肽酒，制备工艺简单、服用方便、提取率高、疗效好以及见效快。
9.为了解决上述技术问题，本技术实施例提供一种鹿血肽酒的制备方法，采用了如下所述的技术方案：
10.一种鹿血肽酒的制备方法，包括下述步骤：
11.s1：称取新鲜鹿血烘干并研磨，获得鹿血粉；
12.s2：称取鹿血粉，溶解于蒸馏水中，超声并恒温震荡，获得鹿血溶液；
13.s3：向所述鹿血溶液中加入碱性蛋白酶，通过加入碱性试剂将所述鹿血溶液的ph值调节为碱性；
14.s4：恒温震荡加入碱性蛋白酶的所述鹿血溶液，以进行酶解反应，酶解过程中继续向所述鹿血溶液中加入碱性试剂；
15.s5：酶解后加入酸性试剂,将所述鹿血溶液的ph值调节为中性；
16.s6：放置于磁力搅拌器上加热灭酶；
17.s7：冷却后离心，提取上清液，获得目标上清液；
18.s8：对所述目标上清液重复步骤s6和步骤s7，获得鹿血肽提取物；
19.s9：将所述鹿血肽提取物与酒勾兑，获得所述鹿血肽酒。
20.进一步的，所述步骤s2中，所述鹿血粉和所述蒸馏水的料液重量比为：1:5～1:50。
21.进一步的，所述加入碱性试剂将所述鹿血溶液的ph值调节为碱性的步骤包括:
22.向所述鹿血溶液中加入1m的naoh，将所述鹿血溶液的ph值调节至9。
23.进一步的，在步骤s3中，所述碱性蛋白酶和所述鹿血溶液的料液重量比为1％～20％。
24.进一步的，在步骤s2中，超声时，超声功率为100，超声时间为5～60min。
25.进一步的，在步骤s2中，恒温震荡在恒温震荡器中进行，时间为1～2h。
26.进一步的，在步骤s4中，恒温震荡在恒温震荡水浴锅中进行，温度为35～75℃，时间为1～8h。
27.进一步的，在步骤s6中，磁力搅拌器的加热灭酶的温度为90～100℃，时间为5～30min。
28.进一步的，在步骤s7中，所述离心在离心机中进行，离心机的转速为9500rpm，离心时间为10min。
29.为了解决上述技术问题，本技术实施例还提供一种鹿血肽酒，采用了如下所述的技术方案：
30.一种由上述制备方法制得的鹿血肽酒。
31.与现有技术相比，本技术实施例主要有以下有益效果：
32.本技术的鹿血肽酒制备工艺简单、服用方便、提取率高、疗效好以及见效快。在生产过程中,最大限度的提取鹿血中的有效成分并保证产品的稳定性。本技术的鹿血肽酒具有抗衰老、抗疲劳和提高免疫力作用,且本技术的制备方法很好的平衡了酒精浓度对保质期及溶解度的影响,并避免鹿血肽酒产生沉淀,得到一种澄清、透亮、有光泽的鹿血肽酒，同时本技术所采用的酶解方法制备出的鹿血肽提取物更易被人体吸收，从而提高产品的保健功效。
附图说明
33.为了更清楚地说明本技术中的方案，下面将对本技术实施例描述中所需要使用的附图作一个简单介绍，显而易见地，下面描述中的附图是本技术的一些实施例，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。
34.图1是根据本技术的鹿血肽酒的制备方法的一个实施例的流程图。
35.图2是鹿血肽酒对小鼠sod活力的影响结果图。
36.图3是鹿血肽酒对小鼠mda含量的影响结果图。
37.图4是鹿血肽酒对小鼠力竭游泳时间的影响结果图。
具体实施方式
38.除非另有定义，本文所使用的所有的技术和科学术语与属于本技术的技术领域的技术人员通常理解的含义相同；本文中在申请的说明书中所使用的术语只是为了描述具体的实施例的目的，不是旨在于限制本技术；本技术的说明书和权利要求书及上述附图说明中的术语“包括”和“具有”以及它们的任何变形，意图在于覆盖不排他的包含。本技术的说明书和权利要求书或上述附图中的术语“第一”、“第二”等是用于区别不同对象，而不是用于描述特定顺序。
39.在本文中提及“实施例”意味着，结合实施例描述的特定特征、结构或特性可以包含在本技术的至少一个实施例中。在说明书中的各个位置出现该短语并不一定均是指相同的实施例，也不是与其它实施例互斥的独立的或备选的实施例。本领域技术人员显式地和隐式地理解的是，本文所描述的实施例可以与其它实施例相结合。
40.以下的实施例便于更好地理解本技术，但并不限定本技术。下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法。下述实施例中所用的实验材料，如无特殊说明，均为自常规生化试剂商店购买得到的。
41.为了使本技术领域的人员更好地理解本技术方案，下面将结合附图，对本技术实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述。
42.一、继续参考图1，示出了根据本技术的鹿血肽酒的制备方法的一个实施例的流程图。所述的鹿血肽酒的制备方法，包括以下步骤：
43.s1：称取新鲜鹿血烘干并研磨，获得鹿血粉；
44.s2：称取鹿血粉，溶解于蒸馏水中，超声并恒温震荡，获得鹿血溶液；
45.s3：向所述鹿血溶液中加入碱性蛋白酶，通过加入碱性试剂将所述鹿血溶液的ph值调节为碱性；
46.s4：恒温震荡加入碱性蛋白酶的所述鹿血溶液，以进行酶解反应，酶解过程中继续向所述鹿血溶液中加入碱性试剂；
47.s5：酶解后加入酸性试剂,将所述鹿血溶液的ph值调节为中性；
48.s6：放置于磁力搅拌器上加热灭酶；
49.s7：冷却后离心，提取上清液，获得目标上清液；
50.s8：对所述目标上清液重复步骤s6和步骤s7，获得鹿血肽提取物；
51.s9：将所述鹿血肽提取物与酒勾兑，获得所述鹿血肽酒。
52.具体制备工艺如下：
53.1、将新鲜鹿血烘干并研磨，制备鹿血粉。
54.2、称取鹿血粉一定量，溶解于一定体积蒸馏水中，获得鹿血溶液，其中，鹿血粉和所述蒸馏水的料液重量比为：1:5～1:50。
55.3、将上述鹿血溶液放置于超声仪中，设置功率为100，超声5分钟～60分钟。
56.4、将上述超声后的鹿血溶液置于恒温振荡器中，震荡1～2小时，使其充分混匀。
57.5、向上述恒温震荡后的鹿血溶液中添加一定量碱性蛋白酶，其中，碱性蛋白酶和所述鹿血溶液的料液重量比(w/w)为1％～20％
58.6、上述添加了碱性蛋白酶的鹿血溶液中添加1m naoh，将鹿血溶液ph值调节至9，可使用ph试纸/ph计测量。
59.7、将上述ph为9的鹿血溶液置于恒温震荡水浴锅中进行酶解反应，反应温度设置为35～75℃,酶解反应时间1～8小时。
60.8、酶解反应过程中，继续向溶液添加naoh溶液(碱性试剂)维持ph恒定。
61.9、向上述鹿血溶液中添加1m hcl(酸性试剂)，将鹿血溶液的ph值调节至中性。
62.10、将上述鹿血溶液放置于磁力搅拌器上加热至90～100℃灭酶，反应5～30分钟。
63.11、待上述鹿血溶液冷却至室温后，使用离心机以转速9500rpm，离心10分钟。
64.12、收集上清液，将不溶沉淀除去，获得目标上清液，对目标上清液重复步骤10和步骤11，收集上清液，获得鹿血肽提取物。
65.13、将鹿血肽提取物以一定比例与酒勾兑在一起，获得鹿血肽酒，一定时间后即可饮用。
66.二、本技术的具体实施例和对比例如下所示：
67.①
实施例1
68.1、将新鲜鹿血烘干并研磨，制备鹿血粉。
69.2、称取鹿血粉一定量，溶解于一定体积蒸馏水中，获得鹿血溶液，其中，鹿血粉和所述蒸馏水的料液重量比为：1:5～1:50。
70.3、将上述鹿血溶液放置于超声仪中，设置功率为100，超声5分钟～60分钟。
71.4、将上述超声后的鹿血溶液置于恒温振荡器中，震荡1～2小时，使其充分混匀。
72.5、向上述恒温震荡后的鹿血溶液中添加一定量碱性蛋白酶，其中，碱性蛋白酶和所述鹿血溶液的料液重量比(w/w)为1％～20％
73.6、上述添加了碱性蛋白酶的鹿血溶液中添加1m naoh，将鹿血溶液ph值调节至9，可使用ph试纸/ph计测量。
74.7、将上述ph为9的鹿血溶液置于恒温震荡水浴锅中进行酶解反应，反应温度设置
为35～75℃,酶解反应时间1～8小时。
75.8、酶解反应过程中，继续向溶液添加naoh溶液维持ph恒定。
76.9、向上述鹿血溶液中添加1m hcl，将鹿血溶液的ph值调节至中性。
77.10、将上述鹿血溶液放置于磁力搅拌器上加热至90～100℃灭酶，反应5～30分钟。
78.11、待上述鹿血溶液冷却至室温后，使用离心机以转速9500rpm，离心10分钟。
79.12、收集上清液，将不溶沉淀除去，获得目标上清液，对目标上清液重复步骤10和步骤11，收集上清液，获得鹿血肽提取物。
80.13、将鹿血肽提取物以一定比例与水稀释在一起，获得鹿血肽溶液。
81.②
实施例2
82.1、将新鲜鹿血烘干并研磨，制备鹿血粉。
83.2、称取鹿血粉一定量，溶解于一定体积蒸馏水中，获得鹿血溶液，其中，鹿血粉和所述蒸馏水的料液重量比为：1:5～1:50。
84.3、将上述鹿血溶液放置于超声仪中，设置功率为100，超声5分钟～60分钟。
85.4、将上述超声后的鹿血溶液置于恒温振荡器中，震荡1～2小时，使其充分混匀。
86.5、向上述恒温震荡后的鹿血溶液中添加一定量碱性蛋白酶，其中，碱性蛋白酶和所述鹿血溶液的料液重量比(w/w)为1％～20％
87.6、上述添加了碱性蛋白酶的鹿血溶液中添加1m naoh，将鹿血溶液ph值调节至9，可使用ph试纸/ph计测量。
88.7、将上述ph为9的鹿血溶液置于恒温震荡水浴锅中进行酶解反应，反应温度设置为35～75℃,酶解反应时间1～8小时。
89.8、酶解反应过程中，继续向溶液添加naoh溶液维持ph恒定。
90.9、向上述鹿血溶液中添加1m hcl，将鹿血溶液的ph值调节至中性。
91.10、将上述鹿血溶液放置于磁力搅拌器上加热至90～100℃灭酶，反应5～30分钟。
92.11、待上述鹿血溶液冷却至室温后，使用离心机以转速9500rpm，离心10分钟。
93.12、收集上清液，将不溶沉淀除去，获得目标上清液，对目标上清液重复步骤10和步骤11，收集上清液，获得鹿血肽提取物。
94.13、将鹿血肽提取物以一定比例与酒勾兑在一起，获得鹿血肽酒。
95.③
对比例1(对照组1)(相比于实施例1和实施例2，对比例1未调节ph值)
96.1、将新鲜鹿血烘干并研磨，制备鹿血粉。
97.2、称取鹿血粉一定量，溶解于一定体积蒸馏水中，获得鹿血溶液，其中，鹿血粉和所述蒸馏水的料液重量比为：1:5～1:50。
98.3、将上述鹿血溶液放置于超声仪中，设置功率为100，超声5分钟～60分钟。
99.4、将上述超声后的鹿血溶液置于恒温振荡器中，震荡1～2小时，使其充分混匀。
100.5、向上述恒温震荡后的鹿血溶液中添加一定量碱性蛋白酶，其中，碱性蛋白酶和所述鹿血溶液的料液重量比(w/w)为1％～20％
101.6、将上述鹿血溶液置于恒温震荡水浴锅中进行酶解反应，反应温度设置为35～75℃,酶解反应时间1～8小时。
102.7、将上述鹿血溶液放置于磁力搅拌器上加热至90～100℃灭酶，反应5～30分钟。
103.8、待上述鹿血溶液冷却至室温后，使用离心机以转速9500rpm，离心10分钟。
104.9、收集上清液，将不溶沉淀除去，获得目标上清液，对目标上清液重复步骤7和步骤8，收集上清液，获得鹿血肽提取物。
105.10、将鹿血肽提取物以一定比例与酒勾兑在一起，获得鹿血肽酒。
106.④
对比例2(对照组2)(相比于实施例1和实施例2，对比例2酶解反应时间为0.5～2h)
107.1、将新鲜鹿血烘干并研磨，制备鹿血粉。
108.2、称取鹿血粉一定量，溶解于一定体积蒸馏水中，获得鹿血溶液，其中，鹿血粉和所述蒸馏水的料液重量比为：1:5～1:50。
109.3、将上述鹿血溶液放置于超声仪中，设置功率为100，超声5分钟～60分钟。
110.4、将上述超声后的鹿血溶液置于恒温振荡器中，震荡1～2小时，使其充分混匀。
111.5、向上述恒温震荡后的鹿血溶液中添加一定量碱性蛋白酶，其中，碱性蛋白酶和所述鹿血溶液的料液重量比(w/w)为1％～20％
112.6、上述添加了碱性蛋白酶的鹿血溶液中添加1m naoh，将鹿血溶液ph值调节至9，可使用ph试纸/ph计测量。
113.7、将上述ph为9的鹿血溶液置于恒温震荡水浴锅中进行酶解反应，反应温度设置为35～75℃,酶解反应时间0.5～2小时。
114.8、酶解反应过程中，继续向溶液添加naoh溶液维持ph恒定。
115.9、向上述鹿血溶液中添加1m hcl，将鹿血溶液的ph值调节至中性。
116.10、将上述鹿血溶液放置于磁力搅拌器上加热至90～100℃灭酶，反应5～30分钟。
117.11、待上述鹿血溶液冷却至室温后，使用离心机以转速9500rpm，离心10分钟。
118.12、收集上清液，将不溶沉淀除去，获得目标上清液，对目标上清液重复步骤10和步骤11，收集上清液，获得鹿血肽提取物。
119.13、将鹿血肽提取物以一定比例与酒勾兑在一起，获得鹿血肽酒。
120.⑤
对比例3(对照组3)(相比于实施例1和实施例2，对比例3反应温度为15～37℃)
121.1、将新鲜鹿血烘干并研磨，制备鹿血粉。
122.2、称取鹿血粉一定量，溶解于一定体积蒸馏水中，获得鹿血溶液，其中，鹿血粉和所述蒸馏水的料液重量比为：1:5～1:50。
123.3、将上述鹿血溶液放置于超声仪中，设置功率为100，超声5分钟～60分钟。
124.4、将上述超声后的鹿血溶液置于恒温振荡器中，震荡1～2小时，使其充分混匀。
125.5、向上述恒温震荡后的鹿血溶液中添加一定量碱性蛋白酶，其中，碱性蛋白酶和所述鹿血溶液的料液重量比(w/w)为1％～20％
126.6、上述添加了碱性蛋白酶的鹿血溶液中添加1m naoh，将鹿血溶液ph值调节至9，可使用ph试纸/ph计测量。
127.7、将上述ph为9的鹿血溶液置于恒温震荡水浴锅中进行酶解反应，反应温度设置为15～37℃,酶解反应时间1～8小时。
128.8、酶解反应过程中，继续向溶液添加naoh溶液维持ph恒定。
129.9、向上述鹿血溶液中添加1m hcl，将鹿血溶液的ph值调节至中性。
130.10、将上述鹿血溶液放置于磁力搅拌器上加热至90～100℃灭酶，反应5～30分钟。
131.11、待上述鹿血溶液冷却至室温后，使用离心机以转速9500rpm，离心10分钟。
132.12、收集上清液，将不溶沉淀除去，获得目标上清液，对目标上清液重复步骤10和步骤11，收集上清液，获得鹿血肽提取物。
133.13、将鹿血肽提取物以一定比例与酒勾兑在一起，获得鹿血肽酒。
134.⑥
对比例4(空白对照组)(相比于实施例1和实施例2，对比例4未进行离心，收集上清液，去除不溶沉淀)
135.1、将新鲜鹿血烘干并研磨，制备鹿血粉。
136.2、称取鹿血粉一定量，溶解于一定体积蒸馏水中，获得鹿血溶液，其中，鹿血粉和所述蒸馏水的料液重量比为：1:5～1:50。
137.3、将上述鹿血溶液放置于超声仪中，设置功率为100，超声5分钟～60分钟。
138.4、将上述超声后的鹿血溶液置于恒温振荡器中，震荡1～2小时，使其充分混匀。
139.5、向上述恒温震荡后的鹿血溶液中添加一定量碱性蛋白酶，其中，碱性蛋白酶和所述鹿血溶液的料液重量比(w/w)为1％～20％
140.6、上述添加了碱性蛋白酶的鹿血溶液中添加1m naoh，将鹿血溶液ph值调节至9，可使用ph试纸/ph计测量。
141.7、将上述ph为9的鹿血溶液置于恒温震荡水浴锅中进行酶解反应，反应温度设置为35～75℃,酶解反应时间1～8小时。
142.8、酶解反应过程中，继续向溶液添加naoh溶液维持ph恒定。
143.9、向上述鹿血溶液中添加1m hcl，将鹿血溶液的ph值调节至中性。
144.10、将上述鹿血溶液放置于磁力搅拌器上加热至90～100℃灭酶，反应5～30分钟。
145.11、将鹿血溶液以一定比例与酒勾兑在一起，获得鹿血肽酒。
146.⑦
抗氧化能力测定
147.选用雄性昆明小鼠42只，分为6组，每组7只。自由进食、进水2d后开始给药。以实施例1、2，对照组1-3，空白对照组作为实验对象。每天灌胃给药0.2ml，灌胃剂量150mg
·
kg-1
，空白对照组灌胃给予同剂量生理盐水，连续给药10d。末次给药30min后，每组进行强迫负重游泳60min，实验完毕后收集血液，测定血液中sod、mda含量。
148.结果如图2和图3所示，其中，图2为鹿血肽酒对小鼠sod活力的影响结果图。图3是鹿血肽酒对小鼠mda含量的影响结果图。
149.从图2可知，实施例1与实施例2可以显著提高小鼠sod活力，并与空白对照组相比有统计学差异。而对照组1-3可以略微提升sod活力，但与空白对照组相比无统计学意义。从结果可知实施例2抗氧化效果最佳。
150.从图3可知，实施例1、实施例2与对照组1、2可以显著降低小鼠mda含量，并与空白对照组相比有统计学差异。而对照组3可以略微降低mda含量，但与空白对照组相比无统计学意义。从结果可知实施例1、2抗氧化效果最佳。
151.⑧
抗疲劳能力测定
152.选用雄性昆明小鼠42只，分为6组，每组7只。自由进食、进水2d后开始给药。以实施例1、2，对照组1-3，空白对照组作为实验对象。每天灌胃给药0.2ml，灌胃剂量150mg
·
kg-1
，空白对照组灌胃给予同剂量生理盐水，连续给药10d。末次给药30min后，小鼠尾部负重5％体重的锁扣，置于25℃恒温水域中游泳，并记录游泳力竭时间。小鼠开始游泳至小鼠头部完全没入水面以下10s不能浮出水面为游泳力竭时间。若小鼠浮在水面上不动，用玻璃棒在其
附近搅动，使其运动。实验完毕后收集血液与肝脏组织，测定血液中血糖、乳酸、血尿氮以及肝糖原含量。如图4所示，图4是鹿血肽酒对小鼠力竭游泳时间的影响结果图。
153.从图4可知，实施例1、实施例2可以显著延长小鼠游泳时间，并与空白对照组相比有统计学差异，其中实施例2提升效果最为明显。而对照组1-3可以略微延长小鼠游泳时间，但与空白对照组相比无统计学意义。从结果可知实施例2抗疲劳效果最佳。
154.表1鹿血肽酒对血糖、乳酸、尿素氮、肝糖原含量的影响
[0155][0156]
从表1可知，实施例1、实施例2可以增加小鼠血糖、乳糖和肝糖原含量，并降低血液中尿素氮的含量。而对照组1-3可以略微增加小鼠血糖、乳糖和肝糖原含量，并略微降低血液中尿素氮的含量。从结果可知实施例2的抗疲劳最佳。
[0157]
综上所述，检测机体中sod活力可以间接反映出机体清除体内自由基的能力，而mda含量反映机体的损伤程度，本发明的鹿血肽酒可以有效提升体内sod活力并降低体内mda含量，表现出十分高效的抗氧化能力。同时，力竭游泳测试时最常用的抗疲劳测试，根据动物实验表明，本发明的鹿血肽酒可以有效提高游泳时间，并增加血液中血糖、乳酸含量以及肝脏中糖原含量，降低血尿氮含量，以上实验结果证明本鹿血肽酒具有良好的改善疲劳的能力。
[0158]
本技术还包括一种由上述制备方法制得的鹿血肽酒。
[0159]
本技术的有益效果如下：
[0160]
1)满足大规模生产的简单处方工艺
[0161]
通过优化生产步骤，实现了在保证鹿血营养价值的基础上，简单易行可大规模生产，同时制备出的鹿血肽酒具有营养成分损失少、更易吸收等优点。
[0162]
2)确定满足更具疗效且品相更好的产品
[0163]
本技术的制备方法很好的平衡了酒精浓度对保质期及溶解度的影响,并提供了一种无沉淀存在的鹿血肽酒,并且得到一种澄清、透亮、有光泽且兼具保健功能的鹿血肽酒产品。
[0164]
3)与同类产品相比具有更好的保健功能
[0165]
对鹿血进行酶解，制备成鹿血多肽，进而制备鹿血肽酒，由于小分子多肽相较于大分子蛋白质类物质在人体内的更容易被肠道吸收，提高了生物利用度，从而提高产品疗效，并且小分子多肽具有更好的抗氧化能力，从而使得该鹿血肽酒具有更好的保健功效。
[0166]
4)营养成分保留全面
[0167]
从鹿血提取到制备成酒，其中舍弃的组分极少，极大程度保留了鹿血中的营养成分，并且其中含有的小分子多肽类物质具有更好的抗氧化能力。
[0168]
总而言之，本技术的鹿血肽酒制备工艺简单、服用方便、提取率高、疗效好以及见效快。鹿血肽酒的生产工艺从传统的鹿血和基酒简单混合到采用现代生产工艺研制新型鹿血肽酒。在生产过程中,最大限度的提取鹿血中的有效成分并保证产品的稳定性。鹿血中有效成分大多数是水溶性物质,酒精浓度过高溶解性较差,而酒精浓度过低会导致保质期过短。且鹿血肽酒中的沉淀问题也是目前制备鹿血肽酒的技术难点。本技术提供具有保健功能的鹿血肽酒及其制备方法,该鹿血肽酒具有抗衰老、抗疲劳和提高免疫力作用,且本技术的制备方法很好的平衡了酒精浓度对保质期及溶解度的影响,并避免鹿血肽酒产生沉淀,得到一种澄清、透亮、有光泽的鹿血肽酒，同时本技术所采用的酶解方法制备出的鹿血多肽更易被人体吸收，从而提高产品的保健功效。
[0169]
尽管本发明的内容已经通过上述优选实施例作了详细介绍，但应当认识到上述的描述不应被认为是对本发明的限制。在本领域技术人员阅读了上述内容后，对于本发明的多种修改和替代都将是显而易见的。因此，本发明的保护范围应由所附的权利要求来限定。
[0170]
应该理解的是，虽然附图的流程图中的各个步骤按照箭头的指示依次显示，但是这些步骤并不是必然按照箭头指示的顺序依次执行。除非本文中有明确的说明，这些步骤的执行并没有严格的顺序限制，其可以以其他的顺序执行。而且，附图的流程图中的至少一部分步骤可以包括多个子步骤或者多个阶段，这些子步骤或者阶段并不必然是在同一时刻执行完成，而是可以在不同的时刻执行，其执行顺序也不必然是依次进行，而是可以与其他步骤或者其他步骤的子步骤或者阶段的至少一部分轮流或者交替地执行。
[0171]
显然，以上所描述的实施例仅仅是本技术一部分实施例，而不是全部的实施例，附图中给出了本技术的较佳实施例，但并不限制本技术的专利范围。本技术可以以许多不同的形式来实现，相反地，提供这些实施例的目的是使对本技术的公开内容的理解更加透彻全面。尽管参照前述实施例对本技术进行了详细的说明，对于本领域的技术人员来而言，其依然可以对前述各具体实施方式所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分技术特征进行等效替换。凡是利用本技术说明书及附图内容所做的等效结构，直接或间接运用在其他相关的技术领域，均同理在本技术专利保护范围之内。